Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2006; 34(04): 230-239
DOI: 10.1055/s-0037-1621074
Schwein
Schattauer GmbH

Epidemiologische Untersuchungen zum Vorkommen von Lawsonia-intracellularis-Infektionen in Schweinebeständen

Epidemiological investigations on Lawsonia intracellularis infections in pig herds
M. Wendt
1   Aus der Klinik für kleine Klauentiere und forensische Medizin und Ambulatorischen Klinik (Direktor: Prof. Dr. K.-H- Waldmann) der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover
,
R. Schulze Johann
2   der Elanco Animal Health, Bad Homburg
,
J. Verspohl
3   und dem Institut für Mikrobiologie (Direktor: Prof. Dr. G.-F. Gerlach) der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover
› Author Affiliations
Further Information

Publication History

Eingegangen: 02 May 2005

akzeptiert: 22 July 2005

Publication Date:
10 January 2018 (online)

Zusammenfassung:

Gegenstand und Ziel: Anhand serologischer Screening-Untersuchungen in Schweinebeständen wird eine Übersicht zur Prävalenz von Lawsonia-(L.-)intracellularis-Infektionen in Deutschland gegeben. In acht Betrieben mit geschlossenem System wurde zudem in einer Querschnittsstudie der zeitliche Ablauf der Serokonversion überprüft. Der Nachweis von Lawsonien in Kot- und Darmproben aus Betrieben mit Durchfallproblematik sollte mit dem Vorkommen von Brachyspiren, Salmonellen und Escherichia (E.) coli verglichen werden. Material und Methoden: Die serologische Untersuchung von Blutproben (Herdenscreening: n = 7546 aus 694 Betrieben, Querschnittsstudie: n = 936 aus acht Betrieben) auf Antikörper gegen L. intracellularissowie der Nachweis von L. intracellularisaus Kot- und Darmproben (n = 826 aus 403 Betrieben) erfolgte mittels indirektem Immunfluoreszenztest. Der Nachweis von Brachyspiren, Salmonellen und E. coli wurde mithilfe kultureller Verfahren durchgeführt. Ergebnisse: Serologisch positive Reagenten ergaben sich bei 43,2% der Blutproben und bei 81,3% der untersuchten Bestände. Sauen haltende Bestände und reine Mastbetriebe waren häufiger seropositiv als Ferkelaufzuchtbetriebe mit und ohne Mast. Antikörper gegen L. intracellularis fanden sich ähnlich häufig in Herden mit klinischer Symptomatik einer porzinen proliferativen Enteropathie (PPE) wie in Herden ohne oder mit anderen klinischen Erkrankungen. Die Querschnittsuntersuchung ergab, dass erste Reagenten schon zur 10. Lebenswoche auftreten, der Hauptanteil jedoch zwischen der 13. und 16. Lebenswoche. Die bakteriologischen Untersuchungen belegen, dass in Beständen mit Durchfallproblematik hämolysierende E. coli(48,4%) und L. intracellularis (33,7%) wesentlich häufiger nachweisbar sind als B. hyodysenteriae (21,1%), Salmonellen (17,3%) oder B. pilosicoli (2,5%). Mischinfektionen von B. hyodysenteriae (3,5%), B. pilosicoli (1,0%) oder Salmonellen (5,6%) zusammen mit L. intracellularis waren selten. Schlussfolgerung und klinische Relevanz: Die sehr weite Verbreitung von L. intracellularis in Deutschland in klinisch unauffälligen Herden wie auch in Beständen mit Durchfall- und Kümmererproblematik erfordert eine gezielte Diagnostik zum Ausschluss anderer Durchfallerreger.

Summary:

Objective: Investigation of the prevalence of Lawsonia (L.) intracellularis infections in Germany by serological herd screening. Additionally, in eight farrow-to-finish herds a cross sectional study was carried out to determine the course of seroconversion. Faecal and intestinal samples were examined to compare the prevalence of L. intracellularis and Brachyspira spp.. Salmonella ssp. as well as Escherichia (E.) coli. Material and methods: An indirect immunofluorescence technique (IFAT) was used to analyse blood samples (screening: n = 7546 from 694 herds, cross sectional study: n = 936 from eight herds) for the presence of antibodies against L. intracellularis. Faecal and intestinalsamples were testedfor the presence of L. intracellularis by IFAT and for Brachypira spp., Salmonella spp. as well as E. coli by culture techniques. Results: Antibodies against L. intracellularis could be detected in 43.2% of the blood sanmplesand in 81.3% of the investigated herds. Sow herds and fattening herds were more often seropositive than piglet herds with or without fattening units. Frequent seropositive results were demonstrated in herds with typical signs (diarrhea and/or wasting) of porcine proliferative enteropathy (PPE) as well as in herds with other clinical symptoms or without any clinical signs. The cross-sectional study showed first antibodies in pigs between week six and 10 before main seroconversion developed between week 13 and 16. Bacteriological investigation of faecal and intestinal samples of diarrheic pigs showed highest rates for haemolytic E. coli (48.4%) and L. intracellularis (33.7%) followed by B. hyodysenteriae (21.1%), Salmonella spp. (17.7%) and B. pilosicoli (2.5%). Mixed infections of animals shedding L. intracellularis were rarely found for B. hyodysenteriae (3.5%) or Salmonella spp. (5.6%). Conclusions and clinical relevance: Results indicate a high prevalence of L. intracellularis infections in pig herds all over Germany. Because L. intracellularis infections also were detected frequently in herds without clinical signs of PPE, specific diagnostic measurements are necessary in diarrheic herds to exclude other reasons for disease.

 
  • Literatur

  • 1 Bane D, Norby B, Gardener I, Roof M, Bush E, Gebhart CJ. The epidemiology of porcine proliferative enteropathy. In: Proc 15th Int Pig Vet Soc Congr. Birmingham: 1998: 107.
  • 2 Biester HE, Schwarte LH. Intestinal adenoma in swine. Am J Path 1931; 7: 175-85.
  • 3 Bisping W, Amtsberg G. Hrsg. Farbatlas zur Diagnose bakterieller Infektionserreger der Tiere. Berlin, Hamburg: Parey; 1988
  • 4 Bonitz A. Untersuchungen zur Diagnostik und Prävalenz von Infektionen durchLawsonia intracellularis bei Schweinen unterschiedlicherAltersgruppen. Diss med vet, Tierärztl Hochsch Hannover. 2001
  • 5 Bronsvoort M, Norby B, Bane DP, Gardner IA. Management factors associated with seropositivity to Lawsonia intracellularis in US swine herds. J Swine Health Prod 2001; 9: 285-90.
  • 6 Chouet S, Prieto C, Mieli L, Veenhuizen MF, McOrist S. Patterns of exposure to Lawsonia intracellularis infection on European pig farms. Vet Rec 2003; 152: 14-7.
  • 7 Collins A, Van Dijk S, McOrist S, Love RJ. Strategic medication and development of immunity to Lawsonia intracellularis. In: Proc 16th Int Pig Vet Soc Congr. Melbourne: 2000: 30.
  • 8 Feltrup C, Verspohl J, Amtsberg G. Zur Diagnostik von Schweinedysenterie und Spirochätendiarrhoe. 1. Mitteilung: Kulturell-biochemische Differenzierung intestinaler Serpulinen in der Routinediagnostik. Dtsch Tierärztl Wschr 1999; 106: 200-7.
  • 9 Gebhart CJ, Lin G-F, McOrist S, Lawson GHK, Murthaugh MP. Cloned DNA probes specific for intracellular-like organism of porcine proliferative enteropathies. J Clin Microbiol 1991; 29: 1001-15.
  • 10 Guedes RMC, Gebhart CJ, Armbruster GA, Roggow BD. Serologic follow- up of a repopulated herd after an outbreak of proliferative hemorrhagic enteropathy. Can JVet Res 2002; 66: 258-63.
  • 11 Guedes RMC, Gebhart CJ, Winkelman NL, Mackie-Nuss RA. A comparative study of an indirect fluorescent antibody test and an immunoperoxidase monolayer assay for the diagnosis of porcine proliferative enteropathy. J Vet Diagn Invest 2002; 14: 420-3.
  • 12 Guedes RMC, Gebhart CJ. Onset and duration of fecal shedding, cell-mediated and humoral immune responses in pigs after challenge with a pathogenic isolate or attenuated vaccine strain of Lawsonia intracellularis. Vet Micro- biol 2003; 91: 135-45.
  • 13 Hagen B, Bilkei G. Seroprevalence of Lawsonia intracellularis in large pig production units. Acta Vet Hung 2003; 51: 163-70.
  • 14 Hammer JM. The temporal relationship of fecal shedding of Lawsonia intracellularis and seroconversion in field cases. J Swine Health Prod 2004; 12: 29-33.
  • 15 Herbst W, Willems H, Baljer G. Verbreitung von Brachyspirahyodysenteriae und Lawsonia intracellularis bei gesunden und durchfallkranken Schweinen. Berl Münch Tierärztl Wschr 2004; 117: 493-8.
  • 16 Holyoake PK, Cutler RS, Caple IW, Monckton RP. Enzyme-linked immunosorbent assay for measuring ileal symbiont intracellularis-specific immunoglobulin G response in sera of pigs. J Clin Microbiol 1994; 32: 1980-5.
  • 17 Jones GF, Ward GE, Murtaugh MP, Lin G, Gebhart CJ. Enhanced detection of intracellular organism of swine proliferative enteritis, ileal symbiont intracellularis, in faeces by polymerase chain reaction. J Clin Microbiol 1993; 31: 2611-5.
  • 18 Keller C, Ohlinger VF. Detection of Lawsonia intracellularis, Brachyspira hyodysenteriae and Brachyspira pilosicoli in clinical samples. In: Proc 18th Int Pig Vet Soc Congr. Hamburg: 2004: 295.
  • 19 Keller C, Ohlinger VF, Nordengran A, Merza M. A blocking ELISA for the detection of antibodies against Lawsonia intracellularis. In: Proc 18th Int Pig Vet Soc Congr. Hamburg: 2004: 293.
  • 20 Knittel JP, Jordan DM, Schwartz KJ, Janke BH, Roof MB, McOrist S, Harris DL. Evaluation of antemortem polymerase chain reaction and serologic methods for detection of Lawsonia intracellularis-exposed pigs. Am J Vet Res 1998; 59: 722-6.
  • 21 Lawson GHK, Rowland AC, MacIntyre N. Demonstration of anew intracellular antigen in porcine proliferative adenomatosis and hamster proliferative ileitis. Vet Microbiol 1985; 10: 303-13.
  • 22 Lawson GHK, McOrist S, Rowland AC, McCartney E, Roberts L. Serological diagnosis of the porcine proliferative enteropathies: implications for aetiology and epidemiology. Vet Rec 1988; 122: 554-7.
  • 23 Lawson GHK, McOrist S, Jasni S, Mackie RA. Intracellular bacteria of porcine proliferative enteropathy: cultivation and maintenance in vitro. J Clin Microbiol 1993; 31: 1136-42.
  • 24 Love RJ, Love DN, Edwards MJ. Proliferative haemorrhagic enteropathy in pigs. Vet Rec 1977; 100: 65-8.
  • 25 Marstaller TA, Armbruster G, Bane DP, Gebhart CJ, Muller R, Weatherford J, Thacker B. Monitoring the prevalence of Lawsonia intracellularis IgG antibodies using serial sampling in growing and breeding swine herds. J Swine Health Prod 2003; 11: 127-30.
  • 26 McOrist S, Boid R, Lawson GHK, McConnell I. Monoclonal antibodies to intracellular Campylobacter organisms of the porcine proliferative entero- pathies. Vet Rec 1987; 121: 421-2.
  • 27 McOrist S, Jasni S, Mackie RA, MacIntyre N, Neef N, Lawson GHK. Reproduction of porcine proliferative enteropathy with pure culture of ileal symbiont intracellularis. Infect Immun 1993; 61: 4286-92.
  • 28 McOrist S, Gebhart CJ, Lawson GHK. Polymerase chain reaction for diagnosis of porcine proliferative enteropathy. Vet Microbiol 1994; 41: 205-12.
  • 29 McOrist S, Gebhart CJ, Boid R, Barns SM. Characterization of Lawsonia intracellularis gen. nov., sp. nov., the obligately intracellular bacterium of porcine proliferative enteropathy. Int J Syst Bacteriol 1995; 45: 820-5.
  • 30 McOrist S, Barcellos DE, Wilson RJ. Global patterns of porcine proliferative enteropathy. Pig J 2003; 51: 26-35.
  • 31 Ohlinger VF, Pesch S, Knittel J. Prevalence of Lawsonia intracellularis in diagnostic samples from Germany, the Netherlands and Belgium. In: Proc 16th Int Pig Vet Soc Congr. Melbourne 2000; 71.
  • 32 Rowland AC, Rowntree PGM. A haemorrhagic bowel syndrome associated with intestinal adenomatosis in the pig. Vet Rec 1972; 91: 235-41.
  • 33 Smith SH, McOrist S, Green LE. Questionnaire survey of proliferative enteropathy on British pig farms. Vet Rec 1998; 142: 690-93.
  • 34 Stege H, Jensen TK, Möller K, Baekbo P, Jorsal SE. Prevalence ofintestinal pathogens in Danish finishing pig herds. Prev Vet Med 2000; 46: 279-92.
  • 35 Waldmann K-H, Wendt M, Amtsberg G. Untersuchungen zur Brachyspira-Diagnostik und Behandlungsstrategie bei der Schweinedysenterie. Dtsch Tierärztl Wschr 2000; 107: 486-9.
  • 36 Walter D, Gebhart C, Kroll J, Holck JT, Chittick W. Serologic profiling and vaccination timing for Lawsonia intracellularis. J Swine Health Prod 2004; 12: 310-3.
  • 37 Wendt M, Bonitz A, McOrist S. Prevalence of Lawsonia intracellularis infection in german breeding herds. In: Proc 16th Int Pig Vet Soc Cong.. Melbourne: 2000: 27.
  • 38 Wendt M. Die proliferative Enteropathie des Schweins. In: Serum-Werk Bernburg AG. Hrsg. Dysenterie beim Schwein. Veterinärspiegel Sonderheft. 2001. Bonn: Beta-Verlag; 15-24.
  • 39 Winkelman NL. Ileitis: An update. Comp Cont Educ Pract Vet 1996; 18: 19-25.
  • 40 Young BJ. A reliable method for demonstrating spirochaetes in tissue sections. J Med Lab Technol 1969; 26: 248-52.