Disziforme Keratitis infolge einer Bartonella-henselae-Infektion: Nachweis einer seltenen okulären Komplikation der Katzenkratz-Krankheit mittels PCR

Bernhard Gabler; Hans-Jörg Linde; Udo Reischl; Chris P. Lohmann

doi:10.1055/s-2000-10372

Klinische Monatsblätter für Augenheilkunde, Table of Contents

Klin Monbl Augenheilkd 2000; 217(5): 299-302
DOI: 10.1055/s-2000-10372

KASUISTIK

Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Disziforme Keratitis infolge einer Bartonella-henselae-Infektion: Nachweis einer seltenen okulären Komplikation der Katzenkratz-Krankheit mittels PCR[1, 2]

Disciforme keratitis after Bartonella henselae associated Cat Scratch Disease: Identification of a rare ocular complication by PCRBernhard Gabler¹ , Hans-Jörg Linde² , Udo Reischl² , Chris P. Lohmann¹

¹ Universitäts-Augenklinik Regensburg, Franz-Josef-Strauss-Allee, 93042 Regensburg (Direktor: Prof. Dr. V.-P. Gabel)
² Institut für Med. Mikrobiologie, Universität Regensburg (Direktor: Prof. Dr. H. Wolf)
E-mail: chris.lohmann@klinik.uni-regensburg.de.

Abstract

Zusammenfassung

Hintergrund Die Katzenkratz-Krankheit ist eine häufige Infektionskrankheit, wobei eine mit dieser Erkrankung assoziierte disziforme Keratitis bisher noch nicht beschrieben worden ist.

Patient Eine 65-jährige Frau wurde über viele Wochen aufgrund einer stromalen Keratitis mit antibiotischen, antiviralen und kortikosteroidalen Augentropfen behandelt, wobei es jedoch nicht zu einer Befundbesserung gekommen ist. Mehrmalige mikrobiologische Tests (Mikroskopie und Kultur) waren negativ. Mittels 16S-rDNA-PCR mit nachfolgender Sequenzierung konnte in einer Hornhautprobe Bartonella henselae identifiziert werden. Daraufhin wurde die topische Therapie auf Cephotaxim umgestellt, und es kam innerhalb kurzer Zeit zur Abheilung der Keratitis unter Ausbildung einer parazentralen Narbe.

Schlussfolgerung Mit Hilfe der 16S-rDNA-PCR konnte im Hornhautmaterial das intrazellulär wachsende Bakterium Bartonella henselae als Auslöser einer disziformen KKK-assoziierten Keratitis identifiziert werden.

Background Cat scratch disease (CSD) is a common infectious disease, however its association with a disciforme keratitis is to our knowledge a previously unreported ocular complication

Patient A 65-year old female was treated unsuccessfully with topical antibiotics, acyclovir and corticosteroids for several weeks because of a disciforme keratitis. Repeatably, microbiological investigations (microscopy and culture) were negative. 16S rDNA-PCR with subsequent DNA-sequencing on material obtained by corneal scrape identified Bartonella henselae. Based on this result we have initiated a treatment with topical cephotaxim and within a short period of time the cornea healed with a paracentral scar.

Conclusion 16S rDNA-PCR was very helpful in identifying the intracellular sited bacterium Bartonella henselae as the causative pathogen of an unusual form of disciforme keratitis.

Schlüsselwörter

Keratitis - Bartonella henselae - Katzenkratz-Krankheit - PCR

Key words

Keratitis - Bartonella henselae - cat scratch disease - PCR

Full Text

References

Literatur

1 Manuskript erstmalig eingereicht am 23. 8. 99 und in der vorliegenden Form angenommen am 24. 3. 00.

01 Adleberg J M, Wittmer C. Use of polymerase chain reaction in the diagnosis of ocular disease. Current Opinion in Ophthalmology. 1995; 6 III 80-85
02 Anderson B E, Neuman M A. Bartonella spp. as emerging human pathogens. Clin Microbiol Rev. 1997; 10: 203-219
03 Anderson B, Sims K, Regnery T. Detection of Rochalimaea henselae DNA in specimens from patients with cat-scratch disease by PCR. J Clin Microbiol. 1994; 32: 942-948
04 Bennett H GB, Hay J, Kirkness C M, Seal D V, Devonshire P. Antimicrobial management of presumed microbial keratitis: guidelines for treatment of central and peripheral ulcers. Br J Ophthalmol. 1998; 82: 137-145
05 Cooper R J, Yeo A C, Bailey A S, Tullo A B. Adenovirus polymerase chain reaction assay for rapid diagnosis of conjunctivitis. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1999; 40: 90-95
06 Fischer G W. Cat scratch disease. In: Mandell, Douglas and Bennetts' principles and practice of infectious dieseases. 4^th edition. Churchill Livingstone Inc ; 1995: 1310-1312
07 Hykin P G, Tobal K, McIntryre G, Matheson M M, Towler H MA, Lightman S. The diagnosis of delayed post-operative endophthalmitis by polymerase chain reaction of bacterial DNA in vitreous samples. J Med Microbio. 1994; 408-415
08 Levey S B, Katz H R, Abrams D A, Hirschbein M J, Marsh M J. The role of cultures in the management of ulcerative keratitis. Cornea. 1997; 16: 383-386
09 Lohmann C P, Reischl U, Linde H J, Gabel V P. Improved detection of microorganisms in endophthalmitis by polymerase chain reaction. Retina. 2000; in press
10 Lohmann C P, Linde H J, Reischl U. Die Schnelldiagnostik einer infektiösen Endophthalmitis mittels Polymerase-Kettenreaktion (PCR): Eine Ergänzung zu den konventionellen mikrobiologischen Diagnostikverfahren. Klin Monatsbl Augenheilkd. 1997; 211: 22-27
11 Lohmann C P, Winkler von Mohrenfels C, Gabler B, Reischl U, Kochanoswki B. Die Polymerase-Kettenreaktion (PCR) zur mikrobiologischen Diagnostik einer infektiösen Keratitis. Klin Monatsbl Augenheilkd. 2000; in press
12 Margileth A. Antibiotic therapy for cat sratch disease: clinical study of therapeutic outcome in 268 patients and a review of the literature. Pediad Infect Dis. 1992; 11: 474-478
13 Maurin M, Raoult D. Antimicrobial susceptibility of Rochalimaea quintana, Rochalimaea vinsonii, and the newly recognized Rochalimaea henselae. J Antimicrob Chemother. 1993; 32: 587
14 Muszynski M J, Eppes S, Riley H D. Granulomatous osteolytic lesion of the skull associated with cat scratch disease. Pediatr Infect Dis. 1987; 6: 199-201
15 Neumann M, Sjöstrand J. Central microbial keratitis in a Swedish city population - a three-year prospective study in Gothenburg. Acta Ophthalmol. 1992; 70: 160-164
16 Ormerod L D, Skolnick K A, Menosky M M, Pavan P R, Pon D M. Retinal and choroidal manifestations of cat-scratch disease. Ophthalmology. 1998; 105: 1024-1031
17 Parinaud H. Conjunctivite infectieuse paraissant transmise à l'homme par les animaux. Recueil Ophthalmol. 1889; 11: 176-178
18 Perkins B A, Swaminathan B, Jackson L A. Pathogenesis of cat scratch disease [Letter]. N Engl J Med. 1992; 327: 1599-1600
19 Rath P M, von Recklinghausen G, Ansorg R. Sero-prevalence of immunglobulin G antibodies to Bartonella henselae in cat owners. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 1997; 16: 326-327
20 Reed J B, Scales D K, Wong M T, Lattuada C P, Dolan M J, Schwab I R. Bartonella henselae neuroretinitis in cat scratch disease. Ophthalmology. 1998; 105: 459-466
21 Regnery R, Tappero J. Unraveling mysteries associated with cat-scratch disease, bacillary angiomatosis, and related syndroms. Emerg Inf Dis. 1995; 1: 16-21
22 Reischl U, Mayer J. Moderne Methoden der Nukleinsäure-Diagnostik. Lab Med. 1993; 17: 456-464
23 Reischl U, Lohmann C P. Die Polymerase-Kettenreaktion und ihre Anwendungsmöglichkeiten zur infektiologischen Diagnostik in der Ophthalmologie. Klin Monatsbl Augenheilkd. 1997; 211: 227-234
24 Tsao C Y. Generalized tonic-clonic status epilepticus in a child with cat scratch disease and encephalopathy. Clin Electroencephalogram. 1992; 23: 65-67
25 Ur-Rehmann S, Metcalfe T W. Anterior uveitis associated with cat scratch disease. Br J Ophthalmology. 1998; 82: 587-588
26 Wear D J, Margileth A M, Hadfield T L, Fischer G W, Schlaegel C J, King F M. Cat Scratch Diesease: a bacterial infection. Science. 1983; 221: 1403-1405
27 Welch D F, Slater L N. Bartonella. In: Balows A (ed.), Hausler WJ, Herrmann KL, Isenberg HD, Shadomy HJ: Manual of Clinical Microbiology, 6^th ed., ASM, Washington D.C.; 1995: 690-695
28 Wilhelmis K R. Bacterial keratitis. In: Pepose JS, Holland GN und Wilhelmis KR (eds): Ocular infection and immunity. Mosby Year Book Inc., St. Louis; 1996: 970-1031
29 Zangwill K M, Hamilton D H, Perkins B A. Cat scratch disease in Connecticut: Epidemiology, risk faktors, and evaluating a new diagnostic test. N Engl J Med. 1993; 329: 8-12