Keimspektrum und Antibiotikasensitivitäten bei eitrigen Zahnerkrankungen von Kaninchen

Zusammenfassung

Gegenstand und Ziel: Die an eitrigen Zahnerkrankungen des Kaninchens beteiligten Keime sollten bestimmt und die wirkungsvollsten Antibiotika ermittelt werden. Material und Methoden: Von 126 Kaninchen mit Kieferabszessen oder eitrigen periapikalen Entzündungen wurden während der chirurgischen Versorgung Tupferproben entnommen und einer bakteriologischen Untersuchung inklusive Antibiogramm zugeführt. Ergebnisse: Es ließ sich ein breites Keimspektrum aus dem aeroben und anaeroben Bereich nachweisen. Unter den Anaerobiern überwogen gramnegative Stäbchen (Prevotella sp., Fusobacterium sp., Bacteroides sp.) und grampositive nichtsporenbildende Kokken (vor allem Peptostreptococcus sp.). Bei den Aerobiern wurden 66,7% gramnegative (vor allem Pasteurella sp., Escherichia coli, Pseudomonas sp.) und 33,3% grampositive Keime (vor allem Streptococcus sp., Staphylococcus sp.) nachgewiesen. Bezogen auf die einzelnen Patienten waren Fluorchinolone in Kombination mit Amoxicillin/Clavulansäure, Chloramphenicol, Amoxicillin/Clavulansäure, Tetrazykline, Pradofloxacin und Kombinationen aus Fluorchinolonen und Metronidazol am häufigsten wirksam. Schlussfolgerung und klinische Relevanz: Aufgrund der Variabilität der beteiligten Erreger und des damit verbundenen unterschiedlichen Ansprechens auf Antibiotika sollte eine medikamentöse Begleit- bzw. Nachbehandlung von Kieferabszessen bei Kaninchen stets anhand einer bakteriologischen Untersuchung mit Antibiogramm durchgeführt werden.

Summary

Objective: Bacteria involved in purulent tooth disease and the most effective antibiotics were investigated. Material and methods: Swab samples were taken from 126 rabbits with facial abscesses or purulent periapical inflammation during surgical treatment. Bacteriological examination and susceptibility testing were performed. Results: A wide range of aerobic and anaerobic bacteria were detected. The most commonly isolated anaerobes were gram-negative rods (Prevotella sp., Fusobacterium sp., Bacteroides sp.) and gram-positive non-sporulating cocci (mostly Peptostreptococcus sp.). Of the aerobes, 66.7% were gram-negative (mostly Pasteurella sp., Escherichia coli, Pseudomonas sp.) while 33.3% were gram-positive (mostly Streptococcus sp., Staphylococcus sp.). Depending on the individual patients, fluoroquinolones in combination with amoxicillin-clavulanate, chloramphenicol, amoxicillin-clavulanate, tetracyclines, pradofloxacin, and fluoroquinolone-metronidazole-combinations were most effective. Conclusion and clinical relevance: Because of the variability of the detected bacteria, considerable differences in antibiotic susceptibility were observed. Therefore, bacterial examination and susceptibility testing are recommended for effective postsurgical treatment of odontogenic abscesses in rabbits.

Schlüsselwörter

Aerobier - Anaerobier - Antibiogramm - Abszess

Keywords

Aerobes - anaerobes - susceptibility testing - abscess

• Literatur

• 1 Appelbaum PC. Quinolone activity against anaerobes. Drugs 1999; (58) (Suppl. 02) 60-64.
• 2 Böhmer E. Hrsg. Abszesse. In: Zahnheilkunde bei Kaninchen und Nagern. Stuttgart: Schattauer; 2011: 195-221.
• 3 Brodt HR. Antibiotikatherapie. Klinik und Praxis der antiinfektiösen Behandlung. Stuttgart: Schattauer; 2013
• 4 Brown DFJ, Brown L. Evaluation of the E test, a novel method of quantifying microbial activitiy. J Antibicrob Chemother 1991; 27: 185-190.
• 5 Brown SA, Rosenthal KL. Kleinsäuger. Repetitorium Veterinärmedizin. Stuttgart: Ulmer; 2002
• 6 Bundestierärztekammer. Leitlinien für den sorgfältigen Umgang mit antibakteriell wirksamen Tierarzneimitteln. 2015
• 7 Collins MD. The genus Gemella. In: The Prokaryotes. Dwarkin M, Falkow S, Rosenberg E, Schleifer KH, Stackebrand E. Hrsg. New York: Springer; 2006: 511-518.
• 8 Forest GH, Oldach DW. Macrolides and clindamycin. In: Infectious Diseases. Gorbach SL, Bartlett JG, Blacklow NR. eds. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins; 2003: 213-233.
• 9 Gabriel S. Hrsg. Abszesstherapie. In: Praxisbuch Zahnmedizin beim Heimtier. Stuttgart: Enke; 2016: 224-234.
• 10 Gardiner BJ, Tai AY, Kotsanas D, Francis MJ, Roberts SA, Ballard SA, Junckerstorff RK, Korman TM. Clinical and microbiological characteristics of Eggerthella lenta bacteremia. J Clin Microbiol 2015; 53: 626-635.
• 11 Geiss HK. Präanalytik Materialauswahl, Probennahme, Lagerung und Transport. In: Mikrobiologische Diagnostik: Bakteriologie – Mykologie – Virologie – Parasitologie. Neumeister B, Geiss HK, Braun RW, Kimmig P. Hrsg. Stuttgart: Thieme; 2009: 126-134.
• 12 Hara-Kudo Y, Morishita Y, Nagaoka Y, Kasuga F, Kumagai S. Incidence of diarrhea with antibiotics and the increase of clostridia in rabbits. J Vet Med Sci 1996; 58: 1181-1185.
• 13 Harcourt-Brown F. The progressive syndrome of acquired dental disease in rabbits. J Exot Pet Med 2007; 16 (03) 146-157.
• 14 Harcourt-Brown F. Dental disease in pet rabbits. 1. Normal dentition, pathogenesis and aetiology. In Practice 2009; 31: 370-379.
• 15 Harcourt-Brown F, Chitty J. Facial abscesses. In: BSAVA Manual of rabbit surgery, dentistry and imaging. Harcourt-Brown F, Chitty J. eds. Gloucester: BSAVA; 2013: 395-422.
• 16 Jang SS, Breher JE, Dabaco LA, Hirsh DC. Organisms isolated from dogs and cats with anaerobic infections and susceptibility to selected antibiotical agents. J Am Vet Med Assoc 1997; 210 (11) 1610-1614.
• 17 Jekl V, Minarikova A, Hauptmann K, Knotek K. Microbial flora of facial abscesses in 30 rabbits – a preliminary study. Proc 22. Europ Congr Vet Dent. Lissabon: 2012: 60-61.
• 18 Khazandi M, Bird PS, Owens J, Wilson G, Meyer JN, Trott DJ. In vitro efficacy of cefovecin against anaerobe bacteria isolated from subgingival plaque of dogs and cats with periodontal disease. Anaerobe 2014; 28: 104-108.
• 19 Konönen E, Bryk A, Niemi P, Kanervo-Nordström A. Antimicrobial susceptibilities of Peptostreptococcus anaerobius and the newly described Peptostreptococcus stomatis isolated from various human sources. Antimicrob Agents Chemother 2007; 51 (06) 2205-2207.
• 20 Laboklin aktuell. Anaerobier: Die vergessenen Bakterien?. Info 2/ 2010
• 21 Medizinische Hochschule Hannover. E-Test. http://www.mh-hannover.de/14238.html
• 22 Potschka H, Richter A, Kroker R. Pharmaka zur Behandlung bakterieller Infektionen. In: Pharmakotherapie bei Haus- und Nutztieren. Löscher W, Richter A, Potschka H. Hrsg. Stuttgart: Enke; 2014: 282-330.
• 23 Rosenthal KL. Therapeutic contraindications in exotic pets. Sem Avian Exot Pet Med 2004; 13 (01) 44-48.
• 24 Schuetz AN. Antimicrobial resistance and susceptibility testing of anaerobic bacteria. Clin Infect Dis 2014; 59: 698-705.
• 25 Seifert H, Dalhoff A. German multicentre survey of the antibiotic susceptibility of Bacteroides fragilis group and Prevotella species isolated from intraabdominal infections: a result from the PRISMA study. J Antimicrob Chemother 2010; 65: 2405-2410.
• 26 Selbitz HJ, Truyen U, Valentin-Weigand P. Tiermedizinische Mikrobiologie, Infektions- und Seuchenlehre. Stuttgart: Enke; 2015
• 27 Sherrard LJ, Graham KA, McGrath SJ, McIlreavey L, Hatch J, Muhlebach MS, Wolfgang MC, Gilpin DF, Elborn JS, Schneiders T, Tunney MM. Antibiotic resistance in Prevotella species from patients with cystic fibrosis. J Antimicrob Chemother 2013; 68: 2369-2374.
• 28 Silley P, Stephan B, Greife HA, Pridmore A. Comparative activity of pradofloxacin against anaerobic bacteria isolated from dogs and cats. J Antimicrob Chemother 2007; 60: 999-1003.
• 29 Smith AJ, Hall V, Thakker B, Gemmel CG. Antimicrobial susceptibility testing of Actinomyces species with 12 antimicrobial agents. J Antimicrob Chemother 2005; 56 (02) 407-409.
• 30 Steininger C, Willinger B. Resistance patterns in clinical isolates of pathogenic Actinomyces species. J Antimicrob Chemother 2016; 71 (02) 422-427.
• 31 Stephan B, Greife HA, Pridmore A, Silley P. Activity of pradofloxacin against Porphyromonas and Prevotella spp. Implicated in periodontal disease in dogs: susceptibility test data from a European multicenter study. Antimicrob Agents Chemother 2008; 52: 2149-2155.
• 32 Tyrell KL, Citron DM, Jenkins JR, Goldstein EJ. Periodontal bacteria in rabbit mandibular and maxillary abscesses. J Clin Microbiol 2002; 40: 1044-1047.
• 33 Varga M. Therapeutics. In: Textbook of Rabbit Medicine. Varga M. ed. London: Butterworth Heinemann; 2014: 137-177.
• 34 Varga M. Abscesses. In: Textbook of Rabbit Medicine. Varga M. ed. London: Butterworth Heinemann; 2014: 249-270.
• 35 Veloo ACM, Welling GW, Degener JE. Antimicrobial susceptibility of clinical relevant gram-positive anaerobic cocci collected over a three-year period in the Netherlands. Antimicrob Agents Chemother 2011; 55: 1199-1203.
• 36 Wybo I, Van der Bossche D, Soetens O, Vekens E, Vandoorslaer K, Claeys G, Glupszinsky Y, Ieven M, Melin P, Nonhoff C, Rodriguez-Villalobos H, Verhaegen J, Piérard D. Fourth Belgian multicentre survey of antibiotic susceptibility of anaerobic bacteria. J Antimicrob Chemother 2014; 69: 155-161.