Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2017; 45(06): 350-356
DOI: 10.15653/TPG-170079
Originalartikel
Schattauer GmbH

Vorkommen der interstitiellen Nephritis bei Schweinen

Article in several languages: deutsch | English
Ines Spiekermeier
1   Landwirtschaftskammer Niedersachsen, Oldenburg
,
Mechthild Freitag
2   Fachbereich Agrarwissenschaften, Fachhochschule Südwestfalen
,
Wolfgang Baumgärtner
3   Institut für Pathologie, Tierärztliche Hochschule Hannover
› Author Affiliations
Further Information

Publication History

Eingegangen: 05 February 2017

Akzeptiert nach Revision: 29 June 2017

Publication Date:
09 January 2018 (online)

Zusammenfassung

Gegenstand und Ziel: Die interstitielle Nephritis als eine Form renaler Erkrankungen tritt bei Schweinen häufig auf. Die nur wenigen Forschungsarbeiten auf diesem Gebiet machen eine weitere Erforschung von Prävalenz und Ätiologie dieser Erkrankung notwendig. Material und Methoden: Insgesamt 169 Nieren konventionell und ökologisch gehaltenener Schweine wurden am Schlachthof zufällig ausgewählt und bezüglich des Entzündungsgrades und des Auftretens von Entzündungszellen untersucht. Des Weiteren wurden die Proben mittels Immunhistologie und In-situ-Hybridisierung auf porzines Circovirus Typ 2 (PCV2) als infektiöses Agens untersucht. Ergebnisse: Alle untersuchten Nieren wiesen eine geringgradige Form der interstitiellen Nephritis auf und als Entzündungszellen fanden sich Lymphozyten, Makrophagen, Plasmazellen, eosinophile und neutrophile Granulozyten in unterschiedlichen Häufigkeiten. Hinsichtlich Entzündungsgrad und Auftreten von Entzündungszellen ergaben sich in Nieren von Schweinen der beiden Haltungsformen signifikante (p ≤ 0,0001) Unterschiede. Ökologisch gehaltene Schweine zeigten im Vergleich zu konventionell gehaltenen Tieren signifikant (p ≤ 0,0001) häufiger eine geringgradige Form der Nephritis sowie ein signifikant (p ≤ 0,0001) häufigeres Vorkommen von Lymphozyten und Makrophagen. Bei Schweinen aus konventioneller Haltung bestand im Vergleich signifikant (p ≤ 0,0001) häufiger eine geringgradige bis mittelgradige Nephritis und es lagen signifikant (p ≤ 0,0001) häufiger Lymphozyten, Plasmazellen, Makrophagen sowie neutrophile Granulozyten vor. Nur in der Niere eines Tieres ließ sich DNS von PCV2 nachweisen. Schlussfolgerung: Die interstitielle Nephritis trat bei ökologisch und konventionellen Schweinen auf. PCV2 konnte als bedeutendes Pathogen für die interstitielle Nephritis bei Schlachtschweinen ausgeschlossen werden. Klinische Relevanz: Aufgrund der hohen Prävalenz der interstitiellen Nephritis und der unbekannten Ursache sind weitere Untersuchungen sinnvoll, um klinische Relevanz und Pathogenese weiter einzugrenzen.

 
  • Literatur

  • 1 Allan GM, Ellis JA. Porcine circoviruses: a review. J Vet Diagn Invest 2000; 12 (01) 3-14.
  • 2 Baker TF, McEwen SA, Prescott JF, Meek AH. The prevalence of leptospirosis and its association with multifocal interstitial nephritis in swine at slaughter. Can J Vet Res 1989; 3 (03) 290-294.
  • 3 Büngener W, Mehlitz D. Histopathological findings in mini-pigs infected with different strains of Trypanosoma brucei . Tropenmed Parasitol 1984; 35 (02) 109-114.
  • 4 Boqvist S, Montgomery JM, Hurst M, Thu HT, Engvall EO, Gunnarsson A, Magnusson U. Leptospira in slaughtered fattening pigs in southern Vietnam: presence of the bacteria in the kidneys and association with morphological findings. Vet Microbiol 2003; 93 (04) 361-368.
  • 5 Calsamiglia M, Segales J, Quintana J, Rossel C, Domingo M. Detection of porcine circovirus type 1 and 2 in serum and tissue samples of pigs with and without postweaning multisystemic wasting syndrome. J Clin Microbiol 2002; 40 (05) 1848-1850.
  • 6 Carpenter JA, Scorgie A, Josephson G. Leptospira interrogans serovar Pomona infection associated with carcass condemnation of swine at slaughter. J Swine Health Prod 2006; 14 (03) 145-148.
  • 7 Caspari K, Grimm F, Kühn N, Caspari NC, Basso W. First report of naturally acquired clinical sarcocystosis in a pig breeding stock. Vet Parasitol 2011; 177 (1–2): 175-178.
  • 8 Cooper VL, Hesse RA, Doster AR. Renal lesions associated with experimental porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) infection. J Vet Diagn Invest 1997; 9 (02) 198-201.
  • 9 De Vries V. Erhebung von Organbefunden und Konfiskatabzügen von Schlachtschweinen an Schlachthöfen in der Schweiz und deren Korrelation mit Betriebs- und Managementdaten. University of Zurich; 2010. Available from: http://www.zora.uzh.ch/42567/1/Erhebung1.pdf
  • 10 Drolet R, D’Allaire S, Larochelle R, Magar R, Ribotta M, Higgins R. Infectious agents identified in pigs with multifocal interstitial nephritis at slaughter. Vet Rec 2002; 150 (05) 139-143.
  • 11 Filho JXO, de Paula DAJ, Morés N, Pescador CA, Ciacci-Zanella JR, Coldebella A, Dutra V, Nakazato L. Interstitial nephritis of slaughtered pigs in the State of Mato. Braz J Vet Med 2012; 32 (04) 313-318.
  • 12 González J, Puschner B, Pérez V, Ferreras MC, Delgado L, Muñoz M, Pérez C, Reyes LE, Velasco J, Fernández V, García-Marín JF. Nephrotoxicosis in Iberian piglets subsequent to exposure to melamine and derivatives in Spain between 2003 and 2006. J Vet Diagn Invest 2009; 21 (04) 558-563.
  • 13 Jacobsen B, Krueger L, Seeliger F, Bruegmann M, Segalés J, Baumgaertner W. Retrospective study on the occurrence of porcine circovirus 2 infection and associated entities in Northern Germany. Vet Microbiol 2009; 138 (1–2): 27-33.
  • 14 Jansen JH, Nordstoga K. Renal lesions in Norwegian slaughter pigs. Macroscopic and light microscopic studies. Zentralbl Veterinarmed A 1992; 39 (08) 582-592.
  • 15 Joo HS, Donaldson-Wood CR, Johnson RH, Campbell RS. Pathogenesis of porcine parvovirus infection: pathology and immunofluorescene in the foetus. J Comp Pathol 1977; 87 (03) 383-391.
  • 16 Kekarainen T, Sibila M, Segalés J. Prevalence of swine Torque teno virus in post-weaning multisystemic wasting syndrome (PMWS)-affected and non-PMWS-affected pigs in Spain. J Gen Virol 2006; 87 (04) 833-837.
  • 17 Larsen NB, Tondering E. Leucocytic interstitial nephritis in pigs. Nord Vet Med 1954; 6: 35-46.
  • 18 Lee CH, Ooi PT, Sheikh Omar AR, Lim BK. Melamine toxicity in pigs. Pertanika J Trop Agric Sci 2011; 34 (01) 175-179.
  • 19 Li M, Anderson GD, Phillips BR, Kong W, Shen DD, Wang J. Interactions of amoxicillin and cefaclor with human renal organic anion and peptide transporters. Drug Metab Dispos 2006; 34 (04) 547-555.
  • 20 López A, Chiers K, Van Hoorebeke S, Stuyven E, Meyns T, Nauwynck H, Welle M, Maes D. Porcine ulcerative dermatitis syndrome in sows: a form of vesicular cutaneous lupus erythematosus?. Vet Rec 2009; 165 (17) 501-506.
  • 21 Martínez J, Segalés J, Aduriz G, Atxaerandio R, Jaro P, Ortega J, Peris B, Corpa JM. Pathological and aetiological studies of multifocal interstitial nephritis in wasted pigs at slaughter. Res Vet Sci 2006; 81 (01) 92-98.
  • 22 Maxie MG, Newman SJ. Urinary System. In: Jubb, Kennedy and Palmer’s Pathology of Domestic Animals. 5th ed.. Maxie MG. ed. St. Louis: Mosby Elsevier; 2007: 425-522.
  • 23 Newman SJ, Confer AW, Panciera RJ. Urinary System. In: Pathologic Basis of Veterinary Disease. 4th ed. McGavin MD, Zachary JF. eds. St. Louis: Mosby Elsevier; 2007: 613-692.
  • 24 Nietfeld JC, Leslie-Steen P. Interstitial nephritis in pigs with adenovirus infection. J Vet Diagn Invest 1993; 5 (02) 269-273.
  • 25 Opriessnig T, Langohr I. Current state of knowledge on porcine circovirus type 2-associated lesions. Vet Pathol 2013; 50 (01) 23-38.
  • 26 Radaelli E, Del Piero F, Aresu L, Sciarrone F, Vicari N, Mattiello S, Tagliabue S, Fabbi M, Scanziani E. Expression of major histocompatibility complex class II antigens in porcine leptospiral nephritis. Vet Pathol 2009; 46 (05) 800-809.
  • 27 Rosell C, Segalés J, Plana-Durán J, Balasch M, Rodríguez-Arrioja GM, Kennedy S, Allan GM, McNeilly F, Latimer KS, Domingo M. Hybridization studies of natural cases of postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS) in pigs. J Comp Pathol 1999; 120: 59-78.
  • 28 Sarli G, Mandrioli L, Panarese S, Brunetti B, Segalés J, Domínquez J, Marcato PS. Characterization of interstitial nephritis in pigs with naturally occurring postweaning multisystemic wasting syndrome. Vet Pathol 2008; 45 (01) 12-18.
  • 29 Scanziani E, Sironi G, Mandelli G. Immunoperoxidase studies on leptospiral nephritis of swine. Vet Pathol 1989; 26 (05) 442-444.
  • 30 Seeliger FA, Brügmann ML, Krüger L, Greiser-Wilke I, Verspohl J, Segalés J, Baumgärtner W. Porcine circovirus type 2-associated cerebellar vasculitis in postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS)-affected pigs. Vet Pathol 2007; 44 (05) 621-634.
  • 31 Sheik-Omar AR, Kadir AR, Bahaman AR. A study on the pathology of swine kidneys condemned at slaughter at an abattoir in Malaysia. Proceedings of the 3rd AAAP Animal Sci Congress. May 6–10 1985; 1: 516-518.
  • 32 Taverne FJ, Van Geijlswijk Heederik DJ, Wagenaar JA, Mouton JW. Modelling concentrations of antimicrobial drugs: comparative pharmacokinetics of cephalosporin antimicrobials and accuracy of allometric scaling in foodproducing and companion animals. BMC Vet Res 2016; 12 (01) 185.
  • 33 Vezzali E, Manno RA, Salerno D, Oberto G, Nyska A, Ramot Y. Spontaneous glomerulonephritis in Göttingen minipigs. Toxicol Pathol 2011; 39 (04) 700-705.
  • 34 Weiss E. Harnorgane. In: Grundriss der speziellen pathologischen Anatomie der Haustiere. 6. Aufl.. Dahme E, Weiss E. Hrsg. Stuttgart: Enke; 2007: 173-201.
  • 35 Zwald AG, Ruegg PL, Kaneene JB, Warnick LD, Wells SJ, Fossler C, Halbert LW. Management practices and reported antimicrobial usage on conventional and organic dairy farms. J Dairy Sci 2004; 87 (01) 191-202.