Laryngorhinootologie 2004; 83(9): 597-605
DOI: 10.1055/s-2004-814503
Otologie
© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Charakterisierung der Genexpression im Innenohr und der Hörbahn hörender und ertaubter Ratten mittels Gene-Arrays

Characterisation of the Gene Expression Profiles in the Inner Ear and the Colliculus Inferior of Normal and Deafened Rats by Gene-Array-TechnologyT.  Stöver1 , K.  Wissel1 , T.  Averbeck1 , T.  Lenarz1 , R.  A.  Altschuler2
  • 1Hals-Nasen-Ohrenklinik der Medizinischen Hochschule Hannover (Direktor: Prof. Dr. T. Lenarz)
  • 2Kresge Hearing Research Institute, Department of Otolaryngology/Head and Neck Surgery; The University of Michigan Medical School
Further Information

Publication History

Eingegangen: 8. Januar 2004

Angenommen: 22. März 2004

Publication Date:
16 September 2004 (online)

Zusammenfassung

Hintergund: Die morphologischen und elektrophysiologischen Folgen einer Ertaubung sind gut charakterisiert, jedoch mangelt es an detaillierten Kenntnissen der molekularen Ursachen und Folgen einer Ertaubung.

Methode: In dieser Studie wurden mittels der Gene-Array-Technik Änderungen der Genexpressionsmuster in separierten Fraktionen der Cochlea und Colliculus inferior normalhörender und mit 10 % Neomycin ertaubter Ratten untersucht. RNA wurde aus dem Modiolus (Mo) und Sensorineuralem Epithel/Laterale Wand (SnE/Lw) und Colliculus inferior (IC) präpariert, mit genspezifischen Primern revers transkribiert, anschließend mit 32P-dATP markiert und mit dem Atlas Rat 1,2 cDNA-Array hybridisiert.

Ergebnisse: Während im IC-Gewebe ertaubter Tiere die Transkriptionsniveaus der meisten Gene konstant blieben, waren die meisten Änderungen der Genexpressionsniveaus im SnE/Lw-Gewebe nachweisbar. Mittels der Gene-Array-Technologie konnten eine Reihe bekannter, jedoch überwiegend unbekannter Innenohr-Gene detektiert werden.

Schlussfolgerungen: Insgesamt bietet die Gene-Array-Technik speziell für die Hörforschung mit ihrem limitierten Untersuchungsmaterial eine geeignete Methode zur Expressionsanalyse tausender Gene gleichzeitig und trägt damit zu einem umfassenderen Verständnis komplexer Regulationsmechanismen im Innenohr bei. Weiterführende Untersuchungen möglicher Kandidatengene (Gene Screening) könnten als Ansatzpunkt zukünftiger Therapiestrategien für das Innenohr eine große Bedeutung erlangen.

Abstract

Background: The phenotype of deafness and its mechanisms are morphologically and electrophysiologically well characterised. However, the molecular mechanisms and the consequences of deafness are poorly understood.

Methods: In this study we investigated changes in gene expression profiles in subfractions of the cochlea and the colliculus inferior, a non-cochlear tissue, of normal and deafened (10 % Neomycin) rats using the gene-array-technology. RNA was prepared from modiolus (Mo) und sensorineural epithel/lateral wall (SnE/Lw) und Colliculus inferior (IC), reverse transcribed with gene specific primers, labeled with 32P-dATP and hybridised with its complementary sequences of 1200 rat ESTs.

Results: Similar gene expression profiles were detected in Mo- and SnE/Lw in normal as well in deafened rats differing significantly from those found in IC. In deafened animals differences in mRNA levels were determined in IC for 8 genes, in Mo für 17 genes and in SnE/Lw for 25 genes in comparison to those of normal rats. By using gene-arrays many genes described in the literature previously could be detected. Otherwise most of the genes found in the cochlea are unknown.

Conclusions: The gene-array-technology is a valuable tool in otological research for gene expression analysis and, therefore, for comprehensive understanding of molecular processes in the inner ear. Furthermore gene screening for candidate genes could be a big step ahead in developing therapies of diseases of the inner ear.

Literatur

  • 1 DeRisi J, Penland L, Brown P O, Bittner M L, Meltzer P S, Ray M, Chen Y, Su Y A, Trent J M. Use of a cDNA microarray to analyse gene expression patterns in human cancer.  Nat Genet. 1996;  14 457-460
  • 2 Lin J, Ozeki M, Javel E, Zhao Z, Pan W, Schlentz E, Levine S. Identification of gene expression profiles in rat ears with cDNA microarrays.  Hear Res. 2003;  175 2-13
  • 3 Chen Z Y, Corey D P. Understanding inner ear development with gene expression profiling.  J Neurobiol. 2002;  53 276-285
  • 4 Cho Y, Gong T W, Stöver T, Lomax M I, Altschuler R A. Gene expression profiles of the rat cochlea, cochlear nucleus, and inferior colliculus.  J Assoc Res Otolaryngol. 2002;  3 54-67
  • 5 Lomax M I, Huang L, Cho Y, Gong T W, Altschuler R A. Differential display and gene arrays to examine auditory plasticity.  Hear Res. 2000;  147 293-302
  • 6 Robertson N G, Khetarpal U, Gutierrez-Espeleta G A, Bieber F R, Morton C C. Isolation of novel and known genes from a human fetal cochlear cDNA library using subtractive hybridization and differential screening.  Genomics. 1994;  23 42-50
  • 7 Mitchell A, Miller J M, Finger P A, Heller J W, Raphael Y, Altschuler R A. Effects of chronic high-rate electrical stimulation on the cochlea and eighth nerve in the deafened guinea pig.  Hear Res. 1997;  105 30-43
  • 8 Fero M L, Rivkin M, Tasch M, Porter P, Carow C E, Firpo E, Polyak K, Tsai L H, Broudy V, Perlmutter R M, Kaushansky K, Roberts J M. A syndrome of multiorgan hyperplasia with features of gigantism, tumorigenesis, and female sterility in p27(Kip1)-deficient mice.  Cell. 1996;  85 733-744
  • 9 Roberts J M. Evolving ideas about cyclins.  Cell. 1999;  98 129-132
  • 10 Sherr C J, Roberts J M. CDK inhibitors: positive and negative regulators of G1-phase progression.  Genes Dev. 1999;  13 1501-1512
  • 11 Löwenheim H, Furness D N, Kil J, Zinn C, Gültig K, Fero M L, Frost D, Gummer A W, Roberts J M, Rubel E W, Hackney C M, Zenner H P. Gene disruption of p27(Kip1) allows cell proliferation in the postnatal and adult organ of corti.  Proc Natl Acad Sci U S A. 1999;  96 4084-4088
  • 12 Uyemura K, Asou H, Takeda Y. Structure and function of peripheral nerve myelin proteins.  Prog Brain Res. 1995;  105 311-318
  • 13 Xu W, Manichella D, Jiang H, Vallat J M, Lilien J, Baron P, Scarlato G, Kamholz J, Shy M E. Absence of P0 leads to the dysregulation of myelin gene expression and myelin morphogenesis.  J Neurosci Res. 2000;  60 714-724
  • 14 Keller M P, Chance P F. Inherited peripheral neuropathy.  Semin Neurol. 1999;  19 353-362
  • 15 Ionasescu V V, Searby C, Greenberg S A. Dejerine-Sottas disease with sensorineural hearing loss, nystagmus, and peripheral facial nerve weakness: de novo dominant point mutation of the PMP22 gene.  J Med Genet. 1996;  33 1048-1049
  • 16 Roa B B, Warner L E, Garcia C A, Russo D, Lovelace R, Chance P F, Lupski J R. Protein Myelin protein zero (MPZ) gene mutations in nonduplication type 1 Charcot-Marie-Tooth disease.  Hum Mutat. 1996;  7 36-45
  • 17 Kovach M J, Lin J P, Boyadjiev S, Campbell K, Mazzeo L, Herman K, Rimer L A, Frank W, Llewellyn B, Wang J abs, Gelber D, Kimonis V E. A unique point mutation in the PMP22 gene is associated with Charcot-Marie-Tooth disease and deafness.  Am J Hum Genet. 1999;  64 1580-1593
  • 18 Hess A, Michel O, Kopec T, Wittekindt C, Bloch W, Stennert E, Addicks K. Detection of extracellular signal-regulated kinase1/2 in the inner ear of guinea pigs.  Neurosci Lett. 2000;  289 72-74
  • 19 Han B H, Holtzman D M. BDNF protects the neonatal brain from hypoxic-ischemic injury in vivo via the ERK pathway.  J Neurosci. 2000;  20 5775-5781
  • 20 Honda S, Nakajima K, Nakamura Y, Imai Y, Kohsaka S. Rat primary cultured microglia express glial cell line-derived neurotrophic factor receptors.  Neurosci Lett. 1999;  275 203-206
  • 21 Kaplan A M, Vigna S R. Gastric inhibitory polypeptide (GIP) binding sites in rat brain.  Peptides. 1994;  15 297-302
  • 22 Yip R G, Wolfe M M. GIP biology and fat metabolism.  Life Sci. 2000;  66 91-103
  • 23 Hayzer D J, Brinson E, Runge M S. A rat beta-interferon-induced mRNA: sequence characterization.  Gene. 1992;  117 277-278
  • 24 Hu J, You S, Li W, Wang D, Nagpal M L, Mi Y, Liang P, Lin T. Expression and regulation of interferon-gamma-inducible protein 10 gene in rat Leydig cells.  Endocrinology. 1998;  139 3637-3645
  • 25 Arnheiter H, Meier E. Mx proteins: antiviral proteins by chance or by necessity?.  New Biol. 1990;  2 851-857
  • 26 Cadoni G, Marinelli L, de Santis A, Romito A, Manna R, Ottaviani F. Sudden hearing loss in a patient hepatitis C virus (HCV) positive on therapy with alpha-interferon: a possible autoimmune-microvascular pathogenesis.  J Laryngol Otol. 1998;  112 962-963
  • 27 Segade F, Gomez-Marquez J. Prothymosin alpha.  Int J Biochem Cell Biol. 1999;  31 1243-1248
  • 28 Zimmermann C E, Burgess B J, Nadol J B . Patterns of degeneration in the human cochlear nerve.  Hear Res. 1995;  90 192-201
  • 29 Halazonetis T D, Georgopoulos K, Greenberg M E, Leder P. c-Jun dimerizes with itself and with c-Fos, forming complexes of different DNA binding affinities.  Cell. 1988;  55 917-924
  • 30 Hocevar B A, Howe P H. Regulation of AP-1 activity by TGF-beta.  Methods Mol Biol. 2000;  142 97-108
  • 31 Ogita K, Matsunobu T, Schacht J. Acoustic trauma enhances DNA binding of transcription factor AP-1 in the guinea pig inner ear.  Neuroreport. 2000;  11 859-862
  • 32 Pirvola U, Xing-Qun L, Virkkala J, Saarma M, Murakata C, Camoratto A M, Walton K M, Ylikoski J. Rescue of hearing, auditory hair cells, and neurons by CEP-1347/KT7515, an inhibitor of c-Jun N-terminal kinase activation.  J Neurosci. 2000;  20 43-50
  • 33 Schulze-Osthoff K, Ferrari D, Los M, Wesselborg S, Peter M E. Apoptosis signaling by death receptors.  Eur J Biochem. 1998;  254 439-459

Priv.-Doz. Dr. med. Timo Stöver

Medizinische Hochschule Hannover · Klinik für Hals-Nasen-Ohrenheilkunde

OE 6500 · Carl-Neuberg-Straße 1 · 30625 Hannover

Email: Stoever.Timo@MH-Hannover.de

    >