Download PDF
Rofo 2001; 173(12): 1131-1136
DOI: 10.1055/s-2001-18891
EXPERIMENTELLE RADIOLOGIE
ORIGINALARBEIT
© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Interstitielle T1-gewichtete MR-Lymphographie mit dem polymeren Kontrastmittel Gadomer-17 im
Tierexperiment

Interstitial T1-weighted MR lymphography with use of the dendritic contrast agent Gadomer-17 in pigsG. Staatz1 , C. C.A. Nolte-Ernsting1 , A. Bücker1 , B. Misselwitz2 , S. Großkortenhaus1 , D. Pflüger1 , R. W. Günther1
  • 1Klinik für Radiologische Diagnostik, Universitätsklinikum der RWTH Aachen
  • 2Kontrastmittelforschung, Schering AG, Berlin
Further Information

Publication History

Publication Date:
06 December 2001 (online)

Also available at
    Permissions and Reprints

Zusammenfassung.

Zielsetzung: Darstellung lokoregionärer Lymphknoten, Lymphbahnen und des Ductus thoracicus in der MRT nach interstitieller Applikation des polymeren Kontrastmittels Gadomer-17. Material und Methoden: Die interstitielle MR-Lymphographie erfolgte bei 15 Hausschweinen in einem 1,5-T-Magneten unter Verwendung einer Ganzkörperspule. Das Kontrastmittel wurde bei je 5 Tieren in einer Dosierung von 2,5, 10 und 20 µmol Gd/kg Körpergewicht in eine hintere Extremität subkutan injiziert. Das applizierte Volumen der Kontrastmittellösungen betrug 1,4 - 2,3 ml. Anschließend wurden T1-gewichtete 3D-Gradientenechosequenzen 1 - 150 Minuten sowie 24 Stunden p. i. in koronarer Schnittführung durchgeführt. Ergebnisse: Inguinale und iliakale Lymphknoten sowie Lymphbahnen zeigten innerhalb von 10 Minuten p. i. eine deutliche KM-Anreicherung, die bis 150 Minuten p. i. langsam abfallend nachweisbar war. Der beste lymphographische Effekt wurde mit der mittleren Kontrastmitteldosierung (10 µmol Gd/kg KG) erzielt. Mit dieser Kontrastmitteldosierung ließen sich auch paraaortale Lymphknoten und der D. thoracicus am besten darstellen. Schlussfolgerung: Die interstitielle Applikation des polymeren Kontrastmittels Gadomer-17 führt zu einer guten Darstellung des Lymphsystems einschließlich der Lymphgefäße in der MRT.

Interstitial T1-weighted MR lymphography with use of the dendritic contrast agent Gadomer-17 in pigs.

Purpose: To investigate the enhancement of regional lymph nodes, lymph vessels and the thoracic duct after subcutaneous administration of the dendritic contrast agent Gadomer-17. Materials and Methods: Interstitial T1-weighted MR lymphography was performed in 15 domestic pigs in a 1.5 T MR scanner using the body coil. The contrast agent was injected subcutaneously at a dose of 2.5, 10 and 20 µmol gadolinium/kg/bw (1.4 - 2.3 ml) in the hind legs of 5 pigs, respectively. T1-weighted coronal 3D-gradient-echo images were obtained 1 to 150 minutes and 24 hours after contrast material injection. Results: Inguinal lymph nodes, iliac lymph nodes and lymph vessels showed peak enhancement within 10 minutes after subcutaneous administration of the contrast agent. The enhancement of the lymphatic system decreased slowly until 150 minutes post injection. The time-response study, which was performed for inguinal and iliac lymph nodes, revealed the best lymphographic effect for Gadomer-17 at a dose of 10 µmol gadolinium/kg/bw. At this dose the paraaortic lymph nodes and the thoracic duct were also best visualized. Conclusion: Interstitial administration of the evaluated dendritic contrast agent Gadomer-17 is highly efficient for the performance of T1-weighted MR lymphography in regional lymph nodes, lymph vessels and the thoracic duct.

Schlüsselwörter:

Magnetresonanztomographie - MR-Lymphographie - Lymphatisches System - Gadolinium - Kontrastmittel

Key words:

Magnetic resonance (MR) - Contrast media - Lymphatic system - Lymphography - Gadolinium - Contrast agent

Literatur

  • 1 Weissleder R, Elizondo G, Wittenberg J, Rabito C A, Bengele H H, Josephson L. Ultrasmall superparamagnetic iron oxide: characterization of a new class of contrast agents for MR imaging.  Radiology. 1990;  175 489-493
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 2 Weissleder R, Heatot J F, Schaffer B K, Nossif N, Papisov M I, Mogdanov A, Brady T J. MR lymphography: study of a high-efficiency lymphotropic agent.  Radiology. 1994;  191 225-230
    PubMedGoogle Scholar
  • 3 Anzai Y, Prince M R. Iron oxide-enhanced MR lymphography: the evaluation of cervical lymph node metastases in head and neck cancer.  J Magn Reson Imaging. 1997;  7 75-81
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 4 Taupitz M, Wagner S, Hamm B, Binder A, Pfefferer D. Interstitial MR lymphography with iron oxide particles: results in tumor-free and VX2 tumor-bearing rabbits.  Am J Roentgenol. 1993;  161 193-200
    PubMedGoogle Scholar
  • 5 Harisinghani M G, Saini S, Slater G J, Schnall M D, Rifkin M D. MR imaging of pelvic lymph nodes in primary pelvic carcinoma with ultrasmall superparamagnetic iron oxide (Combidex): preliminary observations.  J Magn Reson Imaging. 1997;  7 161-163
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 6 Nguyen B C, Stanford W, Thompson B H, Rossi N P, Kernstine K H, Kern J A, Robinson R, Amorosa J K, Mammone J F, Outwater E K. Multicenter clinical trial of ultrasmall superparamagnetic iron oxide in the evaluation of mediastinal lymph nodes in patients with primary lung carcinoma.  J Magn Reson Imag. 1999;  10 468-473
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 7 Wunderbaldinger P, Weissleder R. Experimentelle und klinische Ansätze zur Lymphknotenbildgebung.  Radiologe. 2001;  41 121-130
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 8 Hamm B, Taupitz M, Hussmann P, Wagner S, Wolf K J. MR lymphography with iron oxide particles: dose response studies and pulse sequence optimization in rabbits.  Am J Roentgenol. 1992;  158 183-190
    PubMedGoogle Scholar
  • 9 Vassallo P, Matei C, Heston W DW, McLachan S J, Koutcher J A, Castellino R A. AMI-227-enhanced MR lymphography: usefulness for differentiating reactive from tumor-bearing lymph nodes.  Radiology. 1994;  193 501-506
    PubMedGoogle Scholar
  • 10 Bellin M F, Roy C, Kinkel K, Thoumas D, Zaim S, Vanel D, Tuchmann C, Richard F, Jacquim D, Delcourt A, Challier E, Lebret T, Cluzel P. Lymph node metastases: safety and effectiveness of MR imaging with ultrasmall superparamagnetic iron oxide particles-initial clinical experiments.  Radiology. 1998;  207 799-808
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 11 Taupitz M, Wagner S, Hamm B. Kontrastmittel für die magnetresonantomographische Lymphknotendiagnostik (MR-Lymphographie).  Radiologe. 1996;  36 134-140
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 12 Harika L, Weissleder R, Poss K, Papisov M I. Macromolecular intravenous contrast agent for MR lymphography: characterization and efficacy studies.  Radiology. 1996;  198 365-370
    PubMedGoogle Scholar
  • 13 Harika L, Weissleder R, Poss K, et al. MR lymphography with a lymphotropic T1-type MR contrast agent: Gd-DTPA-PGM.  Magn Res Med. 1995;  33 88-92
    PubMedGoogle Scholar
  • 14 Misselwitz B, Sachse A. Interstitial MR lymphography using Gd-carrying liposomes.  Acta Radiol. 1997;  412 51-55
    PubMedGoogle Scholar
  • 15 Georgi M, Gaa J, Teubner J, Bolte R. Lymphknotendarstellung bei ultraschneller 3D-MR-Angiographie.  Fortschr Röntgenstr. 1999;  170 218-221
    PubMedGoogle Scholar
  • 16 Staatz G, Nolte-Ernsting C CA, Adam G B, Grosskortenhaus S, Misselwitz B, Bücker A, Günther R W. Interstitial T1-weighted MR-lymphography: lipophilic, perfluorinated Gadolinium-chelates in pigs.  Radiology. 2001;  220 129-134
    PubMedGoogle Scholar
  • 17 Misselwitz B, Schmitt-Willich H, Ebert W, Frenzel T, Weinmann H. Pharmacokinetics of Gadomer-17, a new dendritic magnetic resonance contrast agent.  MAGMA. 2001;  12 128-134
    PubMedGoogle Scholar
  • 18 Weissleder R, Elizondo G, Wittenberg J, Rabito C A, Bengele H H, Josephson L. Ultrasmall superparamagnetic iron oxide: characterization of a new class of contrast agents for MR imaging.  Radiology. 1990;  175 489-493
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 19 Guimaraes R, Clement O, Bittoun J, Carnot F, Frija G. MR lymphography with superparamagnetic iron nanoparticles in rats: pathologic contrast enhancement.  Am J Roentgenol. 1994;  162 201-207
    PubMedGoogle Scholar
  • 20 Lee A S, Weissleder R, Brady T J, Wittenberg J. Lymph nodes: microstructural anatomy or MR imaging.  Radiology. 1991;  178 519-522
    PubMedGoogle Scholar
  • 21 Weissleder R, Elizondo G, Josephson L, Compton C C, Fretz C J, Stark D C, Ferrucci T. Experimental lymph node metastases: enhanced detection with MR lymphography.  Radiology. 1989;  171 835-839
    PubMedGoogle Scholar
  • 22 Vassallo P, Matei C, Heston W DH, McLachan S J, Koutcher J A, Castellino R A, et al. Characterization of reactive versus tumor-bearing lymph nodes with interstitial magnetic resonance lymphography in an animal model.  Invest Radiol. 1995;  30 706-711
    PubMedGoogle Scholar
  • 23 Wagner S, Pfefferer D, Ebert W, Kresse M, Taupitz M, Hamm B, Lawaczeck R, Semmler W, Wolf K J. Intravenous MR lymphography with superparamagnetic iron oxide particles: Experimental studies in rats and rabbits.  Eur Radiol. 1995;  5 640-646
    PubMedGoogle Scholar
  • 24 Mühler A, Zhang X, Wang H, Lawaczeck R, Weinmann H J. Investigation of mechanism influencing the accumulation of ultrasmall superparamagnetic iron oxide in lymph nodes.  Invest Radiol. 1995;  30 98-103
    PubMedGoogle Scholar
  • 25 Misselwitz B, Platzek J, Raduchel B, Oellinger J J, Weinmann H J. Gadofluorine 8: initial experience with a new contrastmedium for interstitial MR lymphography.  MAGMA. 1999;  8 190-195
    PubMedGoogle Scholar
  • 26 Ruehm S G, Corot C, Debatin J F. Interstitial MR lymphography with a conventional extracellular gadolinium-based agent: assessment in rabbits.  Radiology. 2001;  218 664-669
    PubMedGoogle Scholar
  • 27 Li D, Zheng J, Weinmann H J. Contrast-enhanced MR imaging of coronary arteries: comparison of intra- and extravascular contrast agents in swine.  Radiology. 2001;  218 670-678
    PubMedGoogle Scholar
  • 28 Nolte-Ernsting C, Bücker A, Adam G, Neuerburg J, Günther R W. T1-gewichtete MR-Ausscheidungsurographie mittels Gd-DTPA und vorheriger niedrigdosierter Gabe eines Diuretikums.  Fortschr Röntgenstr. 1997;  167 314-318
    PubMedGoogle Scholar
  • 29 McLoud T C, Bourgouin P M, Greenberg R W, et al. Bronchogenic carcinoma: analysis of staging in the mediastinum with CT by correlative lymph node mapping and sampling.  Radiology. 1992;  182 319-323
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 30 Castellino R A, Hoppe R T, Blank N, Young S W, Neumann C, Rosenberg S A, Kaplan H S. Computed tomography, lymphography and staging laparotomy: correlations in initial staging of Hodgkin disease.  Am J Roentgenol. 194;  143 37-41
    PubMedGoogle Scholar

Dr. Gundula Staatz

Klinik für Radiologische Diagnostik
Universitätsklinikum der RWTH Aachen

Pauwelsstraße 30

52057 Aachen

Phone: + 49-241-8088332

Fax: + 49-241-8888480

Email: staatz@rad.rwth-aachen.de

      >