Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2010; 38(02): 91-98
DOI: 10.1055/s-0038-1623843
Originalartikel
Schattauer GmbH

PRRSV-Eradikation durch Einsatz einer Lebend - vakzine, partielle Depopulation und Modifizierung der Tierbewegungen (Pig Flow)

PRRSV eradication using a live vaccine, partial depopulation and modified pig flow
A. Griessler
1   Traunkreis Vet Clinic, Ried im Traunkreis, Österreich
,
T. Voglmayr
1   Traunkreis Vet Clinic, Ried im Traunkreis, Österreich
,
M. Holzheu
1   Traunkreis Vet Clinic, Ried im Traunkreis, Österreich
,
A. Palzer
2   Klinik für Schweine (Vorstand: Prof. Dr. K. Heinritzi), Ludwig-Maximilians-Universität, München, Deutschland
,
M. Ogris
3   Intervet GesmbH, Wien, Österreich
,
Ch. Lang
4   Klinik für Schweine (Leiter: Prof. Dr. M. Ritzmann), Department für Nutztiere und öffentliches Gesundheitswesen in der Veterinärmedizin, Veterinär - medizinische Universität Wien, Österreich
,
M. Ritzmann
4   Klinik für Schweine (Leiter: Prof. Dr. M. Ritzmann), Department für Nutztiere und öffentliches Gesundheitswesen in der Veterinärmedizin, Veterinär - medizinische Universität Wien, Österreich
› Author Affiliations
Further Information

Publication History

Eingegangen: 09 December 2009

Akzeptiert: 27 January 2010

Publication Date:
06 January 2018 (online)

Zusammenfassung

Gegenstand und Ziel: Ziel dieser Untersuchung war die gezielte PRRSV-Eradikation in einem Herdbuchzuchtbetrieb in der Jungsauenaufzucht und Mast ohne Ausgliederung von PRRSV-positiven Tiergruppen auf einen anderen Produktionsstandort. Material und Methoden: Die Eliminierung erfolgte in mehreren Schritten: 1. Erhebung des PRRSV-Status der Herde mittels Real-Time-RT-PCR und ELISA sowie zweimalige Vakzination aller Tiere der Jungsauenaufzucht und Mast mit einer Lebendvakzine (Porcilis® PRRS-Lebendimpfstoff, Intervet GesmbH, Wien, Österreich) im Abstand von 21 Tagen. 2. Schließung der Jungsauenaufzucht und Mast für 60 Tage. 3. Teilweise Depopulation“ der Jungsauenaufzucht und Mast durch Modifizierung der Tierbewegungen ohne Entfernung/Ausgliederung auf einen anderen Standort. 4. Integration PRRSV-negativer Schweine und Koexistenz mit positiven Tieren ohne Neuinfektion. Ergebnisse: Die Produktion PRRSV-Anti - körper-(Ak-)negativer Jungsauen unter Koexistenz Ak-positiver Tiergruppen am gleichen Standort ohne Auslösung eines neuen Infektionsausbruches konnte über einen Zeitraum von zumindest 4 Monaten dokumentiert werden. Zu keinem Zeitpunkt der Untersuchung mussten PRRSV-positive Tiergruppen entfernt oder auf einen anderen Standort ausgegliedert werden. Schlussfolgerung: Durch gezielte Anwendung der Lebendvakzine und teilweise Depopulation ohne Entfernung PRRSV-positiver Tiergruppen vom Standort konnte eine PRRSV-Eradikation erreicht werden. Klinische Relevanz: PRRS ist eine der weltweit bedeutsamsten Krankheiten in der Schweineproduktion, wodurch der Prophylaxe, Bekämpfungsmaßnahmen sowie Sanierungs- und Eradi - kationsprogrammen große Bedeutung zukommt.

Summary

Objective: The aim of this study was the specific eradication of PRRSV in breeding gilts and fattening pigs in a breeding farm without the need for moving or transferring PRRSV positive pigs or transfer to an external production site. Material and methods: The eradication was carried out in four steps: 1. Investigation of the PRRSV status of the herd by real-time-RT-PCR and ELISA, as well as twofold vaccination of all breeding gilts and fattening pigs with an attenuated live vaccine (Porcilis® PRRS, Intervet, Vienna, Austria) with an interval of 21 days. 2. Herd closure of the sections breeding gilts and fattening pigs for a period of 60 days. 3. Partial depopulation of breeding gilts and fattening pigs through modified pig flow without removal of PRRSV positive pigs or transfer to an external production site. 4. Integration of PRRSV negative pigs coexisting with PRRSV positive pigs without triggering a re-infection. Results: The production of PRRSV antibody negative breeding gilts under coexistence of PRRSV positive pigs at the same production site without triggering a PRRSV reinfection was documented over a period of 4 months. It was not necessary to remove PRRSV positive pigs or transfer them to an external production site at any time during the whole study period. Conclusion: PRRSV eradication can be carried out successfully by usage of a live vaccine along with partial depopulation without removal or transfer of PRRSV positive pigs to an external production site. Clinical relevance: PRRS is one of the most important diseases in swine production worldwide, whereby the prevention, control measures as well as eradication programs are of great importance.

 
  • Literatur

  • 1 Cano JP, Dee SA, Murtaugh MP, Trincado CA, Pijoan CB. Effect of vaccination with a modified-live porcine reproductive and respiratory syndrome virus vaccine on dynamics of homologous viral infection in pigs. Am J Vet Res 2007; 68: 565-571.
  • 2 Cho JG, Dee SA. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Theriogenology 2006; 66: 655-662.
  • 3 Dee SA, Morrison RB, Joo HS. Eradication of PRRS virus using multi-site production and nursery depopulation. J Swine Health Prod 1993; 1: 20-23.
  • 4 Dee SA, Joo HS. Prevention of the spread of porcine reproductive and respiratory syndrome virus in endemically infected pig herds by nursery depopulation. Vet Rec 1994; 135: 6-9.
  • 5 Dee SA, Joo HS, Henry S. Detecting subpopulations after PRRS virus infection in large breeding herds using multiple serologic tests. J Swine Health Prod 1995; 4: 181-184.
  • 6 Dee SA, Joo HS, Pijoan C. Controlling the spread of PRRS virus in the breeding herd through management of the gilt pool. J Swine Health Prod 1995; 3: 64-69.
  • 7 Dee SA, Molitor TW. Elimination of porcine reproductive and respiratory syndrome virus using a test and removal process. Vet Rec 1998; 143: 474-476.
  • 8 Dee SA, Philips R. Using vaccination and unidirectional pigflow to control PRRSV transmission. J Swine Health Prod 1998; 6: 21-25.
  • 9 Dee SA, Joo HS, Park BK, Molitor TW, Bruna G. Attempted elimination of porcine reproductive and respiratory syndrome virus from a seedstock by vaccination of the breeding herd and nursery depopulation. Vet Rec 1998; 142: 569-572.
  • 10 Dee SA, Deen J, Rossow KD, Weise C, Otake S, Joo HS, Pijoan C. Mechanical transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus throughout a coordinated sequence of events during cold weather. Can J Vet Res 2002; 66: 232-239.
  • 11 Dee SA, Deen J, Rossow KD, Weise C, Eliason R, Otake S, Joo HS, Pijoan C. Mechanical transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus throughout a coordinated sequence of events during warm weather. Can J Vet Res 2003; 67: 12-19.
  • 12 Dee SA, Deen J, Pijoan C. An evaluation of four intervention strategies to prevent mechanical transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Can J Vet Res 2004; 68: 19-26.
  • 13 Geiger JO, Torremorell M, Christianson WT. PRRS virus elimination in a 950 sow two-site isowean system. Proc. 17th IPVS Congress 2002: 278.
  • 14 Gillespie T, Polson DD, Hartsook G, Holck JT. PRRS negative offspring from a positive herd using mass vaccination. Proc. 17th IPVS Congress 2002: 125.
  • 15 Gillespie T, Carroll A. Techniques for PRRSV elimination utilizing modified live virus vaccine on single-site swine farms. Proc. 34th Annu. Meet. Am. Assoc. Swine Pract 2003; 549-552.
  • 16 große Beilage E. Internationale Erfahrungen mit der Bekämpfung des Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome (PRRS). Tierärztl Prax 2002; 30 (G) 153-163.
  • 17 große Beilage E, Bätza HJ. PRRSV-Eradikation: Eine Option für Schweinebestände in Deutschland?. Berl Münch Tierärztl Wochenschr 2007; 120: 470-479.
  • 18 große Beilage E, Nathues H, Meemken D, Harder TC, Doherr MG, Grotha I, Greiser-Wilke I. Frequency of PRRS live vaccine virus (European and North American genotype) in vaccinated and non-vaccinated pigs submitted for respiratory tract diagnostics in North-Western Germany. Prev Vet Med 2009; 92: 31-37.
  • 19 Indik S, Schmoll F, Sipos W, Klein D. Genetic variability of PRRS virus in Austria: consequences for molecular diagnostics and virological qualification. Vet Microbiol 2005; 107: 171-179.
  • 20 Kimman TG, Cornelissen LA, Moormann RJ, Rebel JMJ, Stockhofe-Zurwieden N. Challenges for porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) vaccinology. Vaccine 2009; 27: 3704-3718.
  • 21 Kümmerlen D, Ritzmann M, Fischäß C, Schmidt W, Heinritzi K. Untersuchungen zur Wirksamkeit und Verträglichkeit einer PRRSV-Lebendvakzine (Europäischer Stamm). Tierärztl Umsch 2005; 60: 29-34.
  • 22 Lager KM, Mengeling WL, Brockmeier SL. Homologous challenge of porcine reproductive and respiratory syndrome virus immunity in pregnant swine. Vet Microbiol 1997; 58: 113-125.
  • 23 Lappe F. PRRS-Virus-Eradikation in einem Jungsauenaufzuchtbetrieb ohne Unterbrechung der Produktion mit Hilfe einer modifizierten Lebendvakzine (MLV). Prakt Tierarzt 2008; 89: 317-325.
  • 24 Mavromatis I, Kritas SK, Alexopoulos C, Tsinas A, Kyriakis SC. Field evaluation of a live vaccine against porcine reproductive and respiratory syndrome in fattening pigs. J Vet Med B 1999; 46: 603-612.
  • 25 McCaw MB. PRRSv ELISA limitations, SN antibody response, and viremia following repeated homologous exposures to wild-type virus in adult swine. Proc. 34th Ann. Meeting Am Assoc Swine Vet 2003; 507-509.
  • 26 McCaw MB, Murtaugh M, Laster S, Roberts J, Erickson G. PRRSv rORF specific ELISA antibody responses following repeated homologous wild-type virus challenges. Proc. 18th IPVS Congress 2004 p. 36.
  • 27 Meier WA, Wheeler J, Husmann RJ, Osorio FA. Characteristics of the immune response of pigs to wildtype PRRS virus or to commercially available vaccines: an unconventional response. Proc. 31st Ann. Meet. Am Assoc Swine Pract 2000; 415-418.
  • 28 Neumann EJ, Kliebenstein JB, Johnson CD, Mabry JW, Bush EJ, Seitzinger AH, Green AL, Zimmerman JJ. Assessment of the economic impact of porcine reproductive and respiratory syndrome on swine production in the United States. J Am Vet Med Assoc 2005; 227: 385-392.
  • 29 Okinaga T, Yamagishi T, Yoshii M, Suzuki T, Miyazaki A, Takagi M, Tsunemitsu H. Evaluation of unexpected positive results from a commercial ELISA for antibodies to PRRSV. Vet Rec 2009; 164: 455-459.
  • 30 Otake S, Dee SA, Rossow KD, Deen J, Joo HS, Molitor TW, Pijoan C. Transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus by fomites (boots and overalls). J Swine Health Prod 2002; 10: 59-65.
  • 31 Otake S, Dee SA, Rossow KD, Joo HS, Deen J, Molitor TW, Pijoan C. Transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus by needles. Vet Rec 2002; 150: 114-115.
  • 32 Plana-Durán J, Bastons M, Urniza A, Vayreda M, Vilà X, Mañé H. Efficacy of an inactivated vaccine for prevention of reproductive failure induced by porcine reproductive and respiratory syndrome virus. Vet Microbiol 1997; 55: 361-370.
  • 33 Rajic A, Dewey CE, Deckert AE, Friendship RM, Martin SW, Yoo D. Production of PRRSv-negative commingled from multiple, vaccinated, serologically stable PRRSv-positive breeding herds. J Swine Health Prod 2001; 9: 179-184.
  • 34 Revilla-Fernández S, Wallner B, Truschner K, Benczak A, Brem G, Schmoll F, Mueller M, Steinborn R. The use of endogenous and exogenous reference RNAs for qualitative and quantitative detection of PRRSV in porcine semen. J Virol Methods 2005; 126: 21-30.
  • 35 Sipos W, Lang Ch, Minani A, Fischer L, Ritzmann M, Schmoll F. Comparison of two commercial ELISA systems for the detection of PRRSV-specific antibodies with a gold standard ELISA. Wien Tierärztl Mschr 2009; 96: 28-33.
  • 36 Suarez P, Zardoya R, Martin MJ, Prieto C, Dopazo J, Solana A, Castro JM. phylogenetic relationships of European strains of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) inferred from DNA sequences of putative ORF-5 and ORF-7 genes. Virus Res 1996; 42: 159-165.
  • 37 Voglmayr T, Sipos W, Schuh M, Truschner K, Griessler F, Mourits B, Schmoll F. PRRSV-Eradikation in einem geschlossenen Herdbuchzuchtbetrieb ohne Unterbrechung der Produktion mit Einsatz einer Lebendvirus-(MLV-)Vakzine und Schließung der Herde. Tierärztl Prax 2006; 34 (G) 241-248.
  • 38 Yang JS, Moon HJ, Lee CS, Park SJ, Song DS, Kang BK, Choi JU, Park BK. Elimination of porcine reproductive and respiratory syndrome virus from a seedstock breeding farm and a supplying boar stud by a modified test and removal method. Vet Rec 2008; 162: 333-337.
  • 39 Zimmerman JJ, Benfield DA, Murtaugh MP, Osorio F, Stevenson GW, Torremorell M. Porcine reproductive and respiratory syndrome virus (Porcine arterivirus). In: Diseases of Swine, 9th ed. Straw BE, Zimmerman JJ, d’Allaire S, Taylor DJ. eds. Ames, Iowa, USA: Blackwell; 2006: 387-417.