Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2009; 37(06): 379-385
DOI: 10.1055/s-0038-1623828
Originalartikel
Schattauer GmbH

Eignung des Tiergesundheitsdienstprogramms zur Überwachung und Bekämpfung der progressiven Rhinitis atrophicans

Überprüfung in 17 oberösterreichischen Schweinezuchtbetrieben ohne BestandsmerzungSuitability of the animal health service programme for the surveillance and eradication of progressive atrophic rhinitisEvaluation in 17 Upper Austrian pig breeding farms without herd depopulation
C. Lang
1   Klinik für Schweine (Leitung: Univ. Prof. Dr. M. Ritzmann), Veterinärmedizinische Universität Wien
,
M. Huber
2   Traunkreis Vet Clinic (Leitung: Dr. M. Werner-Tutschku, Dr. A. Griessler), Ried im Traunkreis, Österreich
,
A. Griessler
2   Traunkreis Vet Clinic (Leitung: Dr. M. Werner-Tutschku, Dr. A. Griessler), Ried im Traunkreis, Österreich
,
M. F. De Jong
3   Animal Health Service Deventer, Deventer, Niederlande
,
M. Schuh
1   Klinik für Schweine (Leitung: Univ. Prof. Dr. M. Ritzmann), Veterinärmedizinische Universität Wien
,
M. Ritzmann
1   Klinik für Schweine (Leitung: Univ. Prof. Dr. M. Ritzmann), Veterinärmedizinische Universität Wien
› Author Affiliations
Further Information

Publication History

Eingegangen: 05 March 2009

Akzeptiert: 27 April 2009

Publication Date:
06 January 2018 (online)

Zusammenfassung

Gegenstand und Ziel: Im Zeitraum von 1999 bis 2005 erfolgte eine Statuserhebung über das Vorkommen der progressiven Rhinitis atrophicans (PAR) in 17 oberösterreichischen Schweinevermehrerbetrieben, um in weiterer Folge eine PAR-Freiheit und Zertifizierung zu erreichen und somit die Eignung des Tiergesundheitsdienstprogramms für diesen Zweck zu überprüfen. Material und Methoden: Entsprechend dem Tiergesundheitsdienstprogramm wurden 11 045 Nasen- und Tonsillartupferproben entnommen und mittels PCR auf Pasteurella-multocida- Toxin (PMT) untersucht. Ein Jahr nach Einstellung der ART-(Atrophic- rhinitis-toxoid-)Vakzinierung wurden 2004 und 2005 zusätzlich 179 Blutproben mittels ELISA auf Antikörper gegen PMT untersucht. Ergebnisse: 84 (0,76%) der Nasen- und Tonsillartupferproben waren PMT-positiv. Bei 43 (24,02%) Seren ergab sich ein positiver serologischer Befund, es lagen jedoch keine klinischen Symptome einer PAR vor. Bereits im Jahr 2003 war in 14 Betrieben PMT in Nasen- und Tonsillartupferproben nicht mehr nachweisbar. In 16 Betrieben gelang bis dato die Eradikation des Erregers, lediglich ein Betrieb musste aufgrund der Nichteinhaltung der Vorschriften auf den Status PAR-frei“ verzichten. Schlussfolgerung: Die Studie belegt, dass sich das empfohlene Programm, das auf einem Test-and-Removal-“(T&R-)Prinzip basiert, zur stufenweisen Bekämpfung der PAR ohne komplette Bestandsmerzung eignet. Klinische Relevanz: Das Tiergesundheitsdienstprogramm zur Überwachung und Bekämpfung der progressiven Rhinitis atrophicans konnte im Laufe dieser Studie etabliert werden und wird mittlerweile österreichweit durchgeführt.

Summary

Objective: Between 1999 and 2005 the status of progressive atrophic rhinitis (PAR) was investigated in 17 swine breeding herds. For the control of PAR a specific procedure according to the Austrian herd health programme was used. The applicability of this programme was proved. Material and methods: For the determination of Pasteurella multocida toxin (PMT) 11045 nasal and tonsillar swab samples were collected and analysed by means of PCR. In the years 2004 and 2005 starting about one year after finishing ART (atrophic rhinitis toxoid) vaccination 179 blood samples were taken and serologically analysed for PMT-antibodies by use of the DAKO Cytomation Pasteurella multocida Toxin ELISA Kit (K 0009) (Glostrup, Dänemark). Results: PMT-positive results were found in 84 (0.76%) nasal and tonsillar swab samples. From 1999 until 2005, in 14 of the 17 farms at least one positive result could be found, three farms were negative for PMT over the whole period. In 1999 seven farms were PMT-positive, in the following two years five farms, in 2002 and 2003 two and in 2004 one farm showed positive results. In 16 herds PAR was eradicated successfully while only one farm was not able to fulfil the instructions of the programme. The number of seropositive animals decreased significantly after termination of the vaccination, but 12 months after the last vaccination still 15.38% of the sows had antibodies against PMT. Conclusion: The use of the strict instructions of the Austrian herd health service programme is an appropriate tool for PAR eradication without complete herd depopulation based on a “test and removal” (T & R) protocol. Clinical relevance: During this study, the animal health service programme for the surveillance and eradication of progressive atrophic rhinitis could be established. Meanwhile, the programme is used throughout Austria.

 
  • Literatur

  • 1 Behrens H. Eine Stellungnahme zur Schnüffelkrankheit der Schweine. Tierzüchter 1962; 14: 99-100.
  • 2 De Jong MF. Atrophic rhinitis in pigs – further investigations concerning diagnosis, pathogenesis, treatment and control and epidemiology. PhD Thesis, Vet Med Univ Utrecht, The Netherlands 1985
  • 3 De Jong MF, Nielsen JP. Definition of progressive atrophic rhinitis. Vet Rec 1990; 27: 93-94.
  • 4 De Jong MF, Hunneman WA, Mekkes D, Van Banniseth T. Eradication of atrophic rhinitis toxigenic Pasteurella multocida in art vaccinating sow herds with a PCR-test. Proc. 16th IPVS-Congress, Melbourne, Australia 2000: 477.
  • 5 Donko T, Kovacs M, Magyar T. Association of growth performance with atrophic rhinitis and pneumonia detected at slaughter in a conventional pig herd in Hungary. Acta Veterinaria Hungarica 2005; 53: 287-298.
  • 6 Elling E, Pedersen KB. Atrophic rhinitis in pigs induced by a dermonecrotic type A strain of Pasteurella multocida . In: Atrophic Rhinitis of Pigs. Pedersen KB, Nielsen JC. eds. Comm. Eur. Communities Rep. EUR 8643 EN. Luxemburg: 1983: 123.
  • 7 Franque W. Was ist die Schnüffelkrankheit der Schweine?. Dtsch Zeitschr Ges Tierheilkunde 1830; 1: 75-77.
  • 8 Gagne S, Martineau-Doize B. Nasal epithelial changes induced in piglets by acetic acid and by Bordetella bronchiseptica . J Comp Pathol 1993; 109: 71-81.
  • 9 Jordan RW, Hamilton TDC, Hayes CM, Patel D, Jones PH, Roe JM, Williams NA. Modulation of the humoral immune response of swine and mice mediated by toxigenic Pasteurella multocida . FEMS Immunology and Medical Microbiology 2003; 39: 51-59.
  • 10 Kobisch M, Pennings A. An evaluation in pigs of Nobi-Vac AR and an experimental atrophic rhinitis vaccine containing Pasteurella multocida DNT-toxoid and Bordetella bronchiseptica. Vet Rec 1989; 124: 57-61.
  • 11 Konermann H, Nienhoff H. Zur medikamentellen Prophylaxe der Rhinitis atrophicans beim Schwein. Dtsch Tierärztl Wschr 1973; 80: 225-227.
  • 12 Liao CM, Huang C, Hsuan SL, Chen ZW, Lee WC, Liu CI, Winton JR, Chien MS. Immunogenicity and efficacy of three recombinant subunit Pasteurella multocida toxin vaccines against progressive atrophic rhinitis in pigs. Vaccine 2006; 24: 27-35.
  • 13 Martineau-Doize B, Menard J, Girard C, Frantz JC, Martineau GP. Effects of purified Pasteurella multocida dermonecrotoxin on the nasal ventral turbinates of fattening pigs: Histological observations. Can J Vet Res 1991; 55: 377-379.
  • 14 Müller M, Luksch U, Rosengarten R, Busse HJ, Beier T. Nachweis von toxinbildenden Pasteurella multocida-Stämmen mittels PCR: Neue Wege in der Diagnostik der Rhinitis atrophicans. Vet Wissenschaft und Praxis 2000; 14-15.
  • 15 Müller G, Köhler H, Diller R, Erler W. Antibody reactions after aerogenous or subcutaneous immunization of pigs with Pasteurella multocida antigens. Vaccine 2001; 19: 751-757.
  • 16 Nagai S, Someno S, Yagihashi T. Differentiation of toxigenic from nontoxigenic isolates of Pasteurella multocida by polymerase chain reaction. J Clin Microbiol 1994; 32: 1004-1010.
  • 17 Pedersen KB. Cultural and serological diagnosis of atrophic rhinitis in pigs. In: Atrophic Rhinitis of Pigs. Pedersen KB, Nielsen JC. eds. Comm. Eur. Communities Rep. EUR 8643 EN. Luxemburg: 1983: 22.
  • 18 Rutter JM. Virulence of Pasteurella multocida in atrophic rhinitis of gnotobiotic pigs infected with Bordetella bronchiseptica . Res Vet Sci 1983; 34: 287-295.
  • 19 Schöss P, Kayser G, Jahnke F, Fedke P, Dahms L, Dittmar HJ. Rhinitis atrophicans der Schweine: Ergebnisse der Bestandssanierungen im Weser-Ems- Gebiet seit 1971. Dtsch Tierärztl Wschr 1980; 87: 483-488.
  • 20 To H, Someno S, Nagai S. Development of a genetically modified nontoxigenic Pasteurella multocida toxin as a candidate for use in vaccines against progressive atrophic rhinitis in pigs. Am J Vet Res 2005; 66: 113-118.
  • 21 Van Diemen PM, De Vries Reilingh G, Parmentier HK. Immune responses of piglets to Pasteurella multocida toxin and toxoid. Vet Immunol Immunopathol 1994; 41: 307-321.