Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2004; 32(06): 312-315
DOI: 10.1055/s-0038-1623506
Allgemeines
Schattauer GmbH

Anthelminthika-Resistenzen bei Pferde- und Wiederkäuerhelminthen: neueste Forschungsergebnisse aus molekularbiologischer Sicht[*]

Anthelmintic resistance in helminths of horses and ruminants: Recent molecular research data
G. von Samson-Himmelstjerna
1   Aus dem Institut für Parasitologie (Direktor: Prof. Dr. Thomas Schnieder) der Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover
› Author Affiliations
Further Information

Publication History

Publication Date:
05 January 2018 (online)

Zusammenfassung

Gegenwärtig sind Anthelminthika-Resistenzen bei Pferdeund Wiederkäuerhelminthen bereits weit verbreitet. Es handelt sich dabei in erster Linie um Resistenzen gegen Wirkstoffe aus den Gruppen der Benzimidazole (BZ) und bei kleinen Wiederkäuern auch der makrozyklischen Laktone (ML). Das Angriffsziel der BZ ist das Beta-Tubulin. Gemeinsam mit dem Alpha-Tubulin bildet dieses Protein die röhrenartigen Mikrotubulin-Strukturen in den Zellen der Parasiten und Wirte. Die BZ binden an das Beta-Tubulin und blockieren dadurch den Aufbau von Mikrotubuli. Ohne Mikrotubuli können wichtige Zellstoffwechselvorgänge, wie z. B. der intrazelluläre Transport von Stoffen oder die Zellteilung, nicht mehr stattfinden, sodass der betroffene Organismus abstirbt. Durch molekularbiologische Untersuchungen konnte nachgewiesen werden, dass bei BZ-resistenten Trichostrongyliden des Schafes im Vergleich zu BZ-empfindlichen Würmern Unterschiede in der Gensequenz des Beta-Tubulins auftreten. Dabei wird durch die Expression von Tyrosin anstelle von Phenylalanin, vor allem an der Position 200 des Proteins, die Bindungsintensität zwischen BZ und dem Zielprotein erheblich reduziert. Beim Pferd sind in erster Linie Populationen der auch als Palisadenwürmer bezeichneten kleinen Strongyliden (Cyathostominae) von BZ-Resistenz betroffen. Ähnlich wie bei den Trichostrongyliden wurden auch hier Veränderungen der Beta-Tubulin- Gensequenz im Zusammenhang mit der Resistenz beobachtet. Allerdings scheint hier die Veränderung in der Position 200 nur eine untergeordnete Bedeutung zu haben. Die molekularen Zusammenhänge der Resistenz gegen ML sind bisher nur vergleichsweise wenig untersucht. Neueste Daten zum Resistenzmechanismus bei Cooperia oncophora des Rindes weisen auf Veränderungen im glutamatgesteuerten Chloridionenkanal, dem Zielprotein dieser Wirkstoffklasse, hin.

Summary

Anthelmintic resistance in helminths of horses and ruminants is widespread. This is predominantly the case for compounds belonging to the benzimidazole (BZ) group and particularly concerning small ruminants also for the macrocyclic lactones (ML). The BZ drug target is the betatubulin. Together with the alpha-tubulin subunit this protein builds the microtubule structures in parasite and host cells. The BZs bind to the beta-tubulin and this results in the blocking of the polymerization of the microtubules. Without microtubules important metabolic cell processes like intracellular substrate transport or cell division are interrupted thus leading to the death of the organism. Molecular studies have shown that BZ-resistant sheep trichostrongyles display differences in their beta-tubulin gene sequences compared to susceptible worms. By expression of tyrosine instead of phenylalanine, mainly at position 200, the affinity between BZ and target protein is significantly reduced. In horses mainly populations of the small strongyles (Cyathostomins) have been found to be BZ-resistant. However, here the change at codon 200 appears to be only of minor relevance. The molecular mechanism of ML-resistance is only comparatively little investigated. New data on the resistance mechanism of Cooperia oncophora from cattle indicate that changes in the glutamate gated chloride channel, the target protein of this anthelmintic class, play an important role.

* Nach einem Vortrag auf der Tagung der DVG-Fachgruppe »Parasitologie und Parasitäre Krankheiten«, Aktuelles zur Diagnostik, Epidemiologie und Bekämpfung von Parasitosen bei Nutz-, Haus- & Heimtieren, München- Starnberg, 9.-11. Juni 2004.


 
  • Literatur

  • 1 Beugnet F, Gauthey M, Kerboeuf D. Partial in vitro reversal of benzimidazole resistance by the free-living stages of Haemonchus contortus with verapamil. Vet Rec 1997; 141: 575-6.
  • 2 Chang Y, Wang R, Barot S, Weiss DS. Stoichiometry of a recombinant GABAA receptor. J Neurosci 1996; 16: 5415-24.
  • 3 Drogemuller M, Schnieder T, von Samson-Himmelstjerna G. Beta-tubulin complementary DNA sequence variations observed between Cyathostomins from benzimidazole-susceptible and -resistant populations. J Parasitol 2004; 90: 868-70.
  • 4 Elard L, Cabaret J, Humbert JF. PCR diagnosis of benzimidazole-susceptibity or -resistance in natural populations of the small ruminant parasite, Teladorsagia circumcincta. . Vet Parasitol 1999; 80: 231-7.
  • 5 Humbert JF, Elard L. A simple PCR method for rapidly detecting defined point mutations. Internet: BioMedNet: Technical tips online; 2001
  • 6 Kerboeuf D, Blackhall W, Kaminsky R, von Samson-Himmelstjerna G. P-glycoprotein in helminths: function and perspectives for anthelmintic treatment and reversal of resistance. Int J Antimicrob Agents 2003; 22: 332-46.
  • 7 Kwa MS, Veenstra JG, Roos MH. Benzimidazole resistance in Haemonchus contortus is correlated with a conserved mutation at amino acid 200 in beta-tubulin isotype 1. Mol Biochem Parasitol 1994; 63: 299-303.
  • 8 Kwa MSG, Kooyman FNJ, Boersema JH, Roos MH. Effect of selection for benzimidazole resistance in Haemonchus contortus on β-tubulin isotype 1 and isotype 2 genes. Biochem Biophys Res Commun 1992; 191: 413-9.
  • 9 Macdonald RL, Olsen RW. GABAA receptor channels. Annu Rev Neurosci 1994; 17: 569-602.
  • 10 Molento MB, Prichard RK. Effects of the multidrug-resistance-reversing agents verapamil and CL 347,099 on the efficacy of ivermectin or moxidectin against unselected and drug-selected strains of Haemonchus contortus in jirds (Meriones unguiculatus). . Parasitol Res 1999; 85: 1007-11.
  • 11 Njue AI, Hayashi J, Kinne L, Feng XP, Prichard RK. Mutations in the extracellular domains of glutamate-gated chloride channel alpha3 and beta subunits from ivermectin-resistant Cooperia oncophora affect agonist sensitivity. J Neurochem 2004; 89: 1137-47.
  • 12 Pape M, Posedi J, Failing K, Schnieder T, von Samson-Himmelstjerna G. Analysis of the beta-tubulin codon 200 genotype distribution in a benzimidazole-susceptible and -resistant cyathostome population. Parasitology 2003; 137: 53-9.
  • 13 Prichard RK. Genetic variability following selection of Haemonchus contortus with anthelmintics. Trends Parasitol 2001; 17: 445-53.
  • 14 von Samson-Himmelstjerna G, Buschbaum S, Wirtherle N, Pape M, Schnieder T. TaqMan minor groove binder real-time PCR analysis of beta-tubulin codon 200 polymorphism in small strongyles (Cyathostomin) indicates that the TAC allele is only moderately selected in benzimidazoleresistant populations. Parasitology 2003; 127: 489-96.
  • 15 von Samson-Himmelstjerna G, Pape M, von Witzendorff C, Schnieder T. Allele-specific PCR for the beta-tubulin codon 200 TTC/TAC polymorphism using single adult and larval small strongyle (Cyathostominae) stages. J Parasitol 2002; 88: 254-7.
  • 16 von Samson-Himmelstjerna G, von Witzendorff C, Sievers G, Schnieder T. Comparative use of faecal egg count reduction test, egg hatch assay and beta-tubulin codon 200 genotyping in small strongyles (cyathostominae) before and after benzimidazole treatment. Vet Parasitol 2002; 108: 227-35.
  • 17 Silvestre A, Cabaret J. Mutation in position 167 of isotype 1 beta-tubulin gene of Trichostrongylid nematodes: role in benzimidazole resistance? Mol Biochem Parasitol. 2002; 120: 297-300.
  • 18 von Witzendorff C, Quintana TM, Sievers G, Schnieder T, von Samson-Himmelstjerna G. A survey of benzimidazol resistance in small strongyles (Cyathostominae) in the south of Chile. Arch Med Vet 2003; 35: 187-94.
  • 19 Wolstenholme AJ, Fairweather I, Prichard RK, von Samson-Himmelstjerna G. Drug resistance in veterinary helminths. Trends Parasitol 2004; 20: 469-76.