DER KLINISCHE FALL: Klinische Manifestation einer Mehrfachinfektion mit „Blutparasiten“ nach Splenektomie bei einem Hund. Ein Fallbericht

Zusammenfassung:

Gegenstand und Ziel: Darstellung der Diagnostik und Therapie einer Mehrfachinfektion mit Mycoplasma haemocanis und Anaplasma phagocytophilum sowie möglicherweise Ehrlichia canis. Untersuchungsgut, Material und Methoden: Fallbericht über eine 12-jährige Mischlingshündin, die 3–4 Wochen nach Splenektomie eine regenerative Anämie entwickelte. Die Diagnose der parasitären Mehrfachinfektion wurde durch Nachweis von Erreger-DNA in EDTA-Blut (M. haemocanis) und Knochenmark mittels PCR (A. phagocytophilum) und die der möglichen E.-canis-Infektion anhand eines stark positiven Antikörpertiters im Serum gestellt. Ergebnisse: Nach Diagnosestellung wurde die Hündin über 6 Wochen mit Doxycyclin behandelt. Bei Verlaufskontrollen nach Abschluss der Therapie verlief der direkte Nachweis von Erreger-DNA negativ und es zeigte sich eine vollständige Remission der Krankheitssymptome sowie der hämatologischen Veränderungen. Schlussfolgerung und Klinische Relevanz: Bei einer oder mehreren persistierenden Infektionen können andere Primärinfektionen, immunsuppressive Begleitumstände oder im Fall einer Hämoplasmose eine Splenektomie zum klinischen Ausbruch „blutparasitärer“ Erkrankungen führen. Die Wahl des Nachweisverfahrens ist maßgebend für den Erfolg der Diagnosefindung und die Therapieentscheidung. Der Nachweis erregerspezifischer Antikörper im Serum ermöglicht lediglich die Diagnose verschiedener Erregerexpositionen und kann zusammen mit dem klinischen Bild zur differenzialdiagnostischen Abgrenzung parasitärer Erkrankungen herangezogen werden. Der direkte Erreger-DNA-Nachweis in EDTA-Blut und Knochenmark mittels PCR dient im positiven Fall der Diagnosesicherung und eignet sich auch zur Therapiekontrolle.

Summary

Objective: Diagnostic procedures and treatment options of concurrent infections with Mycoplasma (M.) haemocanis, Anaplasma (A.) phagocytophilum and Ehrlichia (E.) canis are presented and discussed. Material and methods: Case report of a 12-year-old dog which developed a regenerative anemia 3–4 weeks after splenectomy. Diagnosis of a double-infection with “blood parasites” was achieved by serologic tests and DNA detection by PCR in EDTAblood (M. haemocanis) and bone marrow samples (A. phagocytophilum). Additionally, an increased antibody titer against E. canis suggested an infection with E. canis. Results: Following diagnosis the dog was treated with doxycycline for 6 weeks. Successful treatment was confirmed by negative PCR tests of bone marrow for Ehrlichia/Anaplasma and blood for hemoplasma. Therapy led to a complete recovery of the dog. Conclusion and Clinical relevance: Concurrent primary infections, other immunosuppressive reasons or splenectomy in case of hemoplasmosis can activate one or more persistent infections with blood parasites into a clinical phase. The choice of an appropriate screening test is mandatory to achieve a diagnosis and make decisions concerning treatment. Detection of anti-parasitic antibodies can confirm antigen exposition. In conjunction with the presence of clinical symptoms this helps to verify parasitic infection. Detection of organism-specificDNAin peripheral blood or bone-marrow can assure diagnosis of an acute or chronic infection and is appropriate for monitoring treatment.

Schlüsselwörter

Hämoplasmen - Anaplasma phagocytophilum - Ehrlichia canis - infektiöse Anämie - Mycoplasma haemocanis

Key words

Hemoplasma - Anaplasma phagocytophilum - Ehrlichia canis - infectious anemia - Mycoplasma haemocanis

• Literatur

• 1 Borggäfe A, Schaarschmidt D, Müller W, Walla L. Reaktive Arthritis beim Hund nach Leishmanien-Infektion? Nachweis von Leishmania-infantum- DNA mittels PCR in einem arthritischen Gelenk. Tierärztl Prax 2008; 36 (K) 35-41.
• 2 Breitschwerdt E. Canine and feline ehrlichiosis: New developments. Referatesammlung. Verein. Kleintiermedizin, Basel: Tagung der Schweiz; 2005
• 3 Codner EC, Farris-Smith LL. Characterization of the subclinical phase of ehrlichiosis in dogs. J Am Vet Med Assoc 1986; 189 (01) 47-50.
• 4 Cohn LA. Ehrlichiosis and related infections. Vet Clin NorthAmSmallAnim Pract 2003; 33 (04) 863-884.
• 5 Davoust B. L’ehrlichiose canine. Point Vét 1993; 25: 43-51.
• 6 Greene CE. Infectious Diseases of the Dog and Cat, 3rd ed. St. Louis, Missouri: Elsevier; 2006
• 7 Harrus S, Waner T, Aizenberg I, Foley JE, Poland AM, Bark H. Amplification of ehrlichial DNA from dogs 34 months after infection with Ehrlichia canis. J Clin Microbiol 1998; 36 (01) 73-76.
• 8 Hartmann K. Hämobartonellose (infektöseAnämie). In: Praktikum der Hundeklinik, 10. Aufl. Suter P, Kohn B. Hrsg Stuttgart: Parey; 2006: 309-310
• 9 Hoskins JD. Canine haemobartonellosis, canine hepatozoonosis, and feline cytauxzoonosis. Vet Clin North Am Small Anim Pract 1991; 21 (01) 129-140.
• 10 Hoskins JD, Breitschwerdt EB, Gaunt SD, French TW, Burgdorfer W. Antibodies to Ehrlichia canis, Ehrlichia platys, and spotted fever group rickettsiae in Louisiana dogs. J Vet Intern Med 1988; 2 (02) 55-59.
• 11 Iqbal Z, Chaichanasiriwithaya W, Rikihisa Y. Comparison of PCR with other tests for early diagnosis of canine ehrlichiosis. J Clin Microbiol 1994; 32 (07) 1658-1662.
• 12 Kemming G, Messick JB, Mueller W, Enders G, Meisner F, Muenzing S. et al. Can we continue research in splenectomized dogs? Mycoplasma haemocanis: old problem – new insight. Eur Surg Res 2004; 36 (04) 198-205.
• 13 Kemming GI, Messick JB, Enders G, Boros M, Lorenz B, Muenzing S. et al. Mycoplasma haemocanis infection – a kennel disease?. Comp Med 2004; 54 (04) 404-409.
• 14 Kenny MJ, Shaw SE, Beugnet F, Tasker S. Demonstration of two distinct hemotropic mycoplasmas in French dogs. J Clin Microbiol 2004; 42 (011) 5397-5399.
• 15 Messick JB. Hemotrophic mycoplasmas (hemoplasmas): a review and new insights into pathogenic potential. Vet Clin Pathol 2004; 33 (01) 2-13.
• 16 Messick JB. New perspectives about Hemotrophic mycoplasma (formerly, Haemobartonella and Eperythrozoon species) infections in dogs and cats. Vet Clin North Am Small Anim Pract 2003; 33 (06) 1453-1465.
• 17 Neer TM, Breitschwerdt EB, Greene RT, Lappin MR. Consensus statement on ehrlichial disease of small animals from the infectious disease study group of the ACVIM. American College of Veterinary Internal Medicine. J Vet Intern Med 2002; 16 (03) 309-315.
• 18 Perille AL, Matus RE. Canine ehrlichiosis in six dogs with persistently increased antibody titers. J Vet Intern Med 1991; 5 (03) 195-198.
• 19 Sainz A, Amusategui I, Tesouro MA. Ehrlichia platys infection and disease in dogs in Spain. J Vet Diagn Invest 1999; 11 (04) 382-384.
• 20 Schaarschmidt D, Müller W. Labordiagnostische und klinische Aspekte der kaninen Anaplasmose und Ehrlichiose. Tierärztl Prax 2007; 35 (K) 129-136.
• 21 Suter P. Ehrlichiosen, Anaplasmosen, Neorickettsiosen (Rickettssiales-Infektionen, Hunderickettsiosen, canine rickettsiosis). In: Praktikum der Hundeklinik. Suter P, Kohn B. Hrsg Stuttgart: Parey; 2006: 299-302
• 22 Sykes JE, Bailiff NL, Ball LM, Foreman O, George JW, Fry MM. Identification of a novel hemotropic mycoplasma in a splenectomized dog with hemic neoplasia. J Am Vet Med Assoc 2004; 224 (012) 1946–1951 1930-1931.