Klin Monbl Augenheilkd 2008; 225(1): 86-90
DOI: 10.1055/s-2008-1027130
Klinische Studie

© Georg Thieme Verlag KG Stuttgart · New York

Zelluläre Lasermikroskopie zur Detektion von Infiltraten und Ulzera der Hornhaut

Cellular Laser Microscopy of Corneal Ulcer and InfiltrateA. Zhivov1 , O. Stachs1 , R. Kraak1 , R. Guthoff1
  • 1Augenklinik, Universität Rostock
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Eingegangen: 15.11.2007

Angenommen: 17.12.2007

Publication Date:
31 January 2008 (online)

Zusammenfassung

Hintergrund: Das Auftreten von Hornhautulzera kann gelegentlich nach Infektionen, Tragen von Kontaktlinsen oder bei trockenen Augen beobachtet werden. Die konfokale In-vivo-Mikroskopie stellt in der Differenzialdiagnostik von Hornhauterkrankungen eine neue Methode dar, mit der sowohl der pathologische Prozess als auch dessen dynamischer Heilungsverlauf dargestellt werden können. Methode: Wir berichten über pathomorphologische korneale Veränderungen bei Hornhautulzera und kornealen Infiltraten verschiedener Genese, welche sich mittels der konfokalen In-vivo-Mikroskopie darstellen lassen. Grundlage dazu ist das konfokale Laser-Scanning-Mikroskop Heidelberg Retina Tomograph II/ Rostock Cornea Modul. Ergebnisse: Bei einem Hornhautinfiltrat stellt sich eine Besiedlung des Epithels mit am Entzündungsprozess beteiligten Zellen ohne andere morphologische Veränderungen in vivo dar. Bei einem fortgeschrittenen Prozess wie dem Hornhautulkus lassen sich nicht nur die Gewebedefekte, sondern auch ödematöse Strukturen der gesamten Kornea mit Hornhautdickenzunahme, vermehrter Leukozyten- und Langerhans-Zelldichte zeigen. Im Krankheitsverlauf konnte eine stromale sowie eine epitheliale Regeneration der Kornea mit entstehenden Narben nachgewiesen werden. Ein Erregernachweis (Akanthamoebazysten, Pilzmyzelium usw.) ist in Abhängigkeit von der Ätiologie ebenfalls möglich. Schlussfolgerung: Die konfokalen in vivo mikroskopischen Aufnahmen zeigen mikromorphologische Veränderungen, die für die Beurteilung des Heilungsverlaufes der Hornhaut und der Defektgeometrie brauchbar sein können. Ebenfalls werden Hinweise für die Differenzialdiagnose zwischen bakteriellem, mykotischem oder durch Akanthamoeba induziertem Ulkus gegeben.

Abstract

Background: Corneal ulcers can be observed occasionally due to infections, wearing contact lenses or in dry eyes. Confocal microscopy represents a new tool for the differential diagnostic work-up of pathological processes and provides the possibility for dynamic healing control. Methods: We report on the corneal morphological changes caused by corneal ulcers of varying aetiologies. Morphological changes and pathological processes in infiltrates as well as in ulcus corneae can be investigated by means of the confocal in vivo microscopy based on the confocal laser scanning microscope model Heidelberg Retina Tomograph II with the Rostock cornea module. Results: Corneal infiltrates are characterised by inflammatory cell infiltration without other morphological changes. An advanced process like corneal ulcer is characterised by not only the tissue defects but also by oedematous structures of the entire cornea resulting in an increase in corneal thickness, increased cell density of leukocytes and of Langerhans cells. The scar tissue formation as well as epithelium regeneration are documented during the follow-up. Confocal detection of pathogens (acanthamoeba, fungus, etc.) was performed. Conclusion: The confocal microscopic data about micromorphological changes could be useful in the evaluation of defect geometry and healing processes of the cornea. Differential diagnostic distinction between bacterial, fungal or acanthamoeba genesis is possible.

Literatur

  • 1 Bourcier T, Dupas B, Borderie V. et al . Heidelberg retina tomograph II findings of Acanthamoeba keratitis.  Ocul Immunol Inflamm. 2005;  13 (6) 487-492
  • 2 Brasnu E, Bourcier T, Dupas B. et al . In vivo confocal microscopy in fungal keratitis.  Br J Ophthalmol. 2007;  91 (5) 588-591
  • 3 Cavanagh H D, McCulley J P. In vivo confocal microscopy and Acanthamoeba keratitis.  Am J Ophthalmol. 1996;  121 (2) 207-208
  • 4 Guthoff R F, Baudouin C, Stave J. Confocal laser-scanning in-vivo microscopy in ophthalmology - atlas and textbook. Berlin, Heidelberg; Springer 2006
  • 5 Jalbert I, Stapleton F, Papas E. et al . In vivo confocal microscopy of the human cornea.  Br J Ophthalmol. 2003;  87 (2) 225-236
  • 6 Masters B R, Bohnke M. Three-dimensional confocal microscopy of the human cornea in vivo.  Ophthalmic Res. 2001;  33 (3) 125-135
  • 7 Mastropasqua L, Nubile M, Lanzini M. et al . Epithelial dendritic cell distribution in normal and inflamed human cornea: in vivo confocal microscopy study.  Am J Ophthalmol. 2006;  142 (5) 736-744
  • 8 Mathers W D, Nelson S E, Lane J L. et al . Confirmation of confocal microscopy diagnosis of Acanthamoeba keratitis using polymerase chain reaction analysis.  Arch Ophthalmol. 2000;  118 (2) 178-183
  • 9 Stachs O, Zhivov A, Kraak R. et al . In vivo three-dimensional confocal laser scanning microscopy of the epithelial nerve structure in the human cornea.  Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2007;  245 (4) 569-575
  • 10 Stave J, Zinser G, Grummer G. et al . Modified Heidelberg Retinal Tomograph HRT. Initial results of in vivo presentation of corneal structures.  Ophthalmologe. 2002;  99 (4) 276-280
  • 11 Winchester K, Mathers W D, Sutphin J E. Diagnosis of Aspergillus keratitis in vivo with confocal microscopy.  Cornea. 1997;  16 (1) 27-31
  • 12 Winchester K, Mathers W D, Sutphin J E. et al . Diagnosis of Acanthamoeba keratitis in vivo with confocal microscopy.  Cornea. 1995;  14 (1) 10-17
  • 13 Zhivov A, Stachs O, Kraak R. et al . In vivo confocal microscopy of the ocular surface.  Ocul Surf. 2006;  4 (2) 81-93
  • 14 Zhivov A, Stave J, Vollmar B. et al . In vivo confocal microscopic evaluation of langerhans cell density and distribution in the corneal epithelium of healthy volunteers and contact lens wearers.  Cornea. 2007;  26 (1) 47-54

Dr. Andrey Zhivov

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