Download PDF
ZWR - Das Deutsche Zahnärzteblatt 2009; 118(6): 276-287
DOI: 10.1055/s-0029-1233295
Originalia
Chirurgie
© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Sinusbodenaugmentation mit β–Trikalziumphosphat und plättchenreichem Plasma

Sinus Floor Elevation with β–tricalciumphosphate and Platelet–rich PlasmaA. Nitsch1 , R. Gruber2 , I. N. C. Daevers2 , A. Patyk3 , H.–A. Merten4
  • 1Klinik und Poliklinik für Mund–, Kiefer– und Gesichtschirurgie, Medizinische Hochschule Hannover
  • 2Abteilung Mund–, Kiefer– und Gesichtschirurgie, Universitätsmedizin Göttingen
  • 3Labor für zahnärztliche Werkstoffkunde und Technologie, Universitätsmedizin Göttingen
  • 4Klinik für Kieferorthopädie, Medizinische Hochschule Hannover
Further Information

Publication History

Publication Date:
23 June 2009 (online)

Also available at
    Permissions and Reprints

Bei 29 Patienten wurde eine Augmentation des Sinus maxillaris mit β–Trikalziumphosphat (β–TCP, Gruppe A) und mit β–TCP und plättchenreichem Plasma (PRP, Gruppe B) durchgeführt. Bei der nach 3–6 Monaten (Gruppen A1 und B1) bzw. 7–10 Monaten (Gruppen A2 und B2) durchgeführten, sekundären Insertion von Dentalimplantaten wurden mit einem Trepanbohrer Knochenbiopsien gewonnen, die nachfolgend untersucht wurden.

Für die Gruppen A1 (25,35  %) und A2 (50,43  %, p < 0,05) konnten höhere Knochendichten im Vergleich zu den Gruppen B1 (9,8  %) und B2 (8,37  %) nachgewiesen werden. Die β–TCP–Dichte betrug in Gruppe A1 28,2  % und in A2 8,77  % (p < 0,05). Tendenziell größere β–TCP–Dichten wurden für die Gruppe B1 (49,34 %) und für die Gruppe B2 (52,99 %) bestimmt. Die Bindegewebsdichten waren vergleichbar (34,98  % bis 46,12  %, p > 0,05).

Histomorphologisch resultierte eine fortschreitende hydrolytische β–TCP–Degradation mit einer zellulären Resorption der keramischen Makro– und Mikrofragmente. Die Knochenregeneration verläuft unilateral vom knöchernen Sinusboden in Richtung des kranialen Augmentatareals.

Nach den vorliegenden Ergebnissen kann auf die zusätzliche Applikation von PRP bei der Sinusbodenaugmentation mit β–TCP verzichtet werden.

29 patients underwent sinus floor elevation with β–tricalciumphosphate (β–TCP, group A) and β–TCP in combination with platelet–rich plasma (PRP, group B). After 3–6 months (groups A1 and B1) resp. 7–10 months (groups A2 and B2) a secondary insertion of dental implants followed with taking of biopsies for a histomorphometric and histomorphological evaluation.

The greatest bone densities were detected for groups A1 (25,35 %) and A2 (50,43  %, p < 0,05) contrary to groups B1 (9,8  %) and B2 (8,37  %). The density of β–TCP was in group A1 28,2  % and in A2 8,77  % (p < 0,05). Greater β–TCP densities were verified in group B1 (49,34  %) and B2 (52,99  %). The density of connective tissue were comparable in the groups (34,98  %–46,12  %, p > 0,05). Histomorphological, a progressive hydrolytic β–TCP–degradation was noticed with a cellular resorption of ceramic fragments. The bone regeneration starts from maxilla, no multilocular bone regeneration could be observed.

PRP is mitogenic but not osteoinductive. The results show that an additional application of PRP in combination with β–TCP can be disclaimed.

Schlüsselwörter

Sinusbodenaugmentation - β–Trikalziumphosphat - PRP - Knochenregeneration

Key words

Sinus Floor Elevation - β–tricalciumphosphate - Platelet–rich Plasma - Bone Regeneration

Literatur

  • 1 Border WA, Noble NA.. Transforming growth factor–β in tissue fibrosis.  N Engl J Med. 1994;  331 1286-1292
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 2 Caplan AI.. Mesenchymal stem cells.  J Orthop Res. 1991;  9 641-650
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 3 Choi BH, Zhu SJ, Kim BY. et al. . Effect of platelet–rich plasma (PRP) concentration on the viability and proliferation of alveolar bone cells: an in vitro study.  Int J Oral Maxillofac Surg. 2005;  34 420-424
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 4 Coerper S, Koveker G, Flesch I. et al. . Ulcus cruris venosum: Chirurgisches Debridement, antibiotische Therapie und Stimulation mit thrombozytären Wachstumsfaktoren.  Langenbecks Arch Chir. 1995;  380 102-107
    PubMedGoogle Scholar
  • 5 Elgazzar RF, Mutabagani MA, Abdelaal SE. et al. . Platelet rich plasma enhance peripheral nerve regeneration after cyanoacrylate reanastomosis: a controlled blind study in rats.  Int J Oral Maxillofac Surg. 2008;  37 748-755
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 6 Ferreira CF, Carriel MC, Filho JS. et al. . Platelet–rich plasma influence on human osteoblasts growth.  Clin Oral Impl Res. 2005;  16 456-460
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 7 Gehring S, Hoerauf H, Laqua H. et al. . Preparation of autologous platelets for the ophthalmologic treatment of macular holes.  Transfusion. 1999;  39 144-148
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 8 Gruber R, Ludwig A, Arnold J. et al. . Bone density and volumetry by CT after sinus augmentation with GDF–5 coated BETA–TCP.  Int J Oral Maxillofac Surg. 2003;  32 96-97
    PubMedGoogle Scholar
  • 9 Jung RE, Schmoekel HG, Zwahlen R. et al. . Platelet–rich plasma and fibrin as delivery systems for recombinant human bone morphogenetic protein–2.  Clin Oral Impl Res. 2005;  16 676-682
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 10 Kakudo N, Minakata T, Mitsui T. et al. . Proliferation–promoting effect of platelet–rich plasma on human adipose–derived stem cells and human dermal fibroblasts.  Plast Reconstr Surg. 2008;  122 1352-1360
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 11 Khalafi RS, Bradford DW, Wilson MG.. Topical application of autologous blood products during surgical closure following a coronary artery bypasses graft.  Eur J Cardiothorac Surg. 2008;  34 360-364
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 12 Klongnoi B, Rupprecht S, Kessler P. et al. . Lack of beneficial effects of platelet–rich plasma on sinus augmentation using a fluorohydroxyapatite or autogenous bone : an explorative study.  J Clin Periodontol. 2006;  33 500-509
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 13 Lekholm U, Zarb GA.. Patient selection and preparation. In: Branemark PA, Zarb GA, Albrektsson T (Hrsg.). Tissue–integrated prostheses: Osseointegration in clinical dentistry. Chicago: Quintessenz 1995: 199-209
    Google Scholar
  • 14 Marx RE, Carlson ER, Eichstaedt RM. et al. . Platelet–rich plasma: a growth factor enhancement for bone grafts.  Oral Surg Oral Med Oral Pat Oral Rad End. 1998;  85 638-646
    PubMedGoogle Scholar
  • 15 Merten HA, Wiltfang J, Hönig JF. et al. . Intraindividueller Vergleich von a– und β–TCP–Keramik im Tierexperiment.  Mund Kiefer GesichtsChir. 2000;  4 509-515
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 16 Merten HA, Gruber RM, Nitsch A. et al. . Evaluation oralchirurgischer Augmentationsmaterialien – Ein tierexperimentell–histomorphologischer Vergleich.  Implantologie. 2003;  11 215-236
    PubMedGoogle Scholar
  • 17 Mischkowski RA, Selbach I, Neugebauer J. et al. . Lateral femoral cutaneous nerve and iliac crest bone grafts – anatomical and clinical considerations.  Int J Oral Maxillofac Surg. 2006;  35 366-72
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 18 Nitsch A, Merten HA, Verheggen R.. Histologischer Vergleich unterschiedlicher Biopolymere im enossalen Defekt.  Schweiz Monatsschr Zahnmed. 2007;  17 720-727
    PubMedGoogle Scholar
  • 19 Nitsch A, Verheggen R, Holste J. et al. . Rekonstruktion der Stirnhöhlenvorderwand mit Biopolymeren.  Schweiz Monatsschr Zahnmed. 2008;  118 12-21
    PubMedGoogle Scholar
  • 20 Pierce GF, Mustoe TA, Lingelbach J. et al. . Platelet–derived growth factor and transforming growth factor–beta enhance tissue repair activities by unique mechanisms.  J Cell Biol. 1989;  140 1375-1388
    PubMedGoogle Scholar
  • 21 Raghoebar GM, Schortinghuis J, Liem RS. et al. . Does platelet–rich plasma promote remodeling of autologous bone grafts used for augmentation of the maxillary sinus floor?.  Clin Oral Implants Res. 2005;  16 349-356
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 22 Schlegel KA, Grummt F, Neukam FW. et al. . Tierexperimentelle Untersuchung zur osteogenetischen Potenz von PRP – Beimengung zu autogenem Knochen bei Hartgewebsdefekten des Kiefers.  ZWR – Das Deutsche Zahnärzteblatt. 2004;  1 8-12
    PubMedGoogle Scholar
  • 23 Schlegel KA, Thorwarth M, Plesinac A. et al. . Expression of bone matrix proteins during the osseous healing of topical conditioned implants: an experimental study.  Clin Oral Implants Res. 2006;  17 666-672
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 24 Schlegel KA, Zimmermann R, Thorwarth M. et al. . Sinus floor elevation using autogenous bone or bone substitute combined with platelet–rich plasma.  Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol Endod. 2007;  104 15-25
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 25 Schmitz JP, Hollinger JO.. The critical size defect as an experimental model for craniomandibulofacial nonunions.  Clin Orthop Relat Res. 1986;  205 299-308
    PubMedGoogle Scholar
  • 26 Wahl G.. Indikation, Kontraindikation und Differentialindikation aus chirurgischer Sicht. In: Koeck B, Wagner W (Hrsg.). Praxis der Zahnheilkunde, Bd. 13 Implantologie; Urban & Schwarzenberg 1996: 34-37
    Google Scholar
  • 27 Weibrich G, Kleis WKG, Kunz–Kostomanolakis M. et al. . Correlation of platelet concentration in platelet–rich plasma to the extraction method, age, sex, and plaetelet count of the donor.  Int J Oral Maxillofac Implants. 2001;  16 693-699
    PubMedGoogle Scholar
  • 28 Weibrich G, Hansen T, Kleis W. et al. . Effect of platelet concentration in platelet–rich plasma on peri–implant bone regeneration.  Bone. 2004;  34 665-671
    CrossrefPubMedGoogle Scholar
  • 29 Wiltfang J, Kloss FR, Kessler P. et al. . Effects of platelet–rich plasma on bone healing in combination with autogenous bone and bone substitutes in critical–size defects. An animal experiment.  Clin Oral Implants Res. 2004;  15 187-193
    CrossrefPubMedGoogle Scholar

Korrespondenzadresse

Dr. Axel Nitsch

Klinik und Poliklinik für Mund–, Kiefer– und Gesichtschirurgie, Medizinische Hochschule Hannover

Carl–Neuberg–Str. 1

30675 Hannover

Email: axel.nitsch@gmx.de

      >