Palavras-chave
biomateriais - hidroxiapatitas - magnésio - osso e ossos - regeneração óssea
Introdução
A bioengenharia tecidual óssea, área emergente, interdisciplinar e multidisciplinar,
tem ganhado destaque nos últimos anos devido aos avanços técnico-científicos alcançados
e as crescentes demandas biomédicas e socioeconômicas da sociedade atual. Os investigadores
desta área têm aplicado os princípios das ciências biológicas e da saúde, da química,
da física e da engenharia para desenvolver e melhorar técnicas regenerativas e biomateriais
capazes de restaurar ou melhorar a função e a estética de tecidos e órgãos comprometidos.[1]
[2]
[3]
[4]
A aplicabilidade desses biomateriais é definida pela presença de propriedades físico-químicas,
biológicas e morfológicas semelhantes e compatíveis com tecidos vivos para atuarem
como arcabouços tridimensionais (3D), que auxiliem a regeneração tecidual ou, ainda,
atuem como substitutos adequados de tecidos e órgãos danificados ou perdidos. Dentre
os diversos biomateriais hoje disponíveis, as biocerâmicas de fosfato de cálcio (CaP)
representam uma classe amplamente pesquisada e utilizada em técnicas de regeneração
óssea.[1] Dentre esses materiais, a hidroxiapatita (HA) sintética tem se destacado nas últimas
décadas devido à sua biocompatibilidade, semelhança com a apatita biológica, bioatividade,
osteocondutividade, não imunogenicidade e eventos celulares facilitadores observados
durante a regeneração tecidual, como angiogênese e osteogênese.[1]
[2]
[3]
[4] No entanto, esta cerâmica apresenta baixas taxas de biodegradação e bioabsorção
após a implantação in vivo, assíncronas em relação ao mecanismo de regeneração óssea.[1]
[2]
[3]
[4] Além disso, é um material rígido e quebradiço, que pode permanecer no sítio de implantação
por meses e até anos, dependendo do método de síntese e processamento.[4]
[5]
Diante disso, um dos principais objetivos dos pesquisadores nesta área tem sido melhorar
as propriedades da HA sintética e modificar as características deste material para
potencializar a resposta tecidual após a implantação in vivo. Dentre os diferentes métodos disponíveis para realizar essas modificações, as substituições
isomórficas da estrutura hexagonal da HA têm apresentado resultados satisfatórios[3]
[6] devido aos efeitos nas propriedades físicas do material, observados por alterações
nos parâmetros de rede, estrutura cristalina, morfologia, solubilidade e estabilidade
térmica em comparação à HA sem substituição.[7]
Nestes casos, outros metais, como o zinco (Zn), estrôncio (Sr), flúor (F), manganês
(Mn) e magnésio (Mg), podem substituir o cálcio (Ca).[3]
[4]
[6] O magnésio (Mg) tem despertado grande interesse científico, visto que, entre outras
propriedades, participa da homeostase do tecido ósseo. Além disso, juntamente com
outros minerais, é fundamental para o mecanismo de regeneração óssea, pois estimula
a formação óssea por meio da ativação de osteoblastos, e inibe a reabsorção por sua
ação sobre os osteoclastos.[8]
[9]
[10]
[11]
Apesar dessas possibilidades, as propriedades físico-químicas, o comportamento biológico
e a capacidade regenerativa do CaP substituído por Mg ainda necessitam de mais estudos
para assegurar a eficácia das técnicas utilizadas durante a síntese e processamento
desses biomateriais. Portanto, este estudo avaliou o reparo de defeitos ósseos não
críticos após a implantação de microesferas de HA com substituição por Mg na calvária
de ratos.
Materiais e Métodos
Biomateriais
Os biomateriais avaliados neste estudo foram sintetizados, processados e esterilizados
no Laboratório de Biomateriais (LABIOMAT) do Centro Brasileiro de Pesquisas Físicas
(CBPF). Sua síntese, processamento e caracterização foram descritos por Santos et
al.[4]
Procedimentos Cirúrgicos
Este estudo foi realizado no biotério da Universidade Estadual de Feira de Santana
(UEFS) após aprovação do Comitê de Ética no Uso de Animais (CEUA) da Escola Bahiana
de Medicina e Saúde Pública, protocolo 02/2013. Trinta ratos Wistar adultos, machos,
com peso corporal entre 350 e 400 g, foram distribuídos aleatoriamente em 3 grupos
experimentais com 5 animais cada: GHA (grupo com defeito preenchido com microesferas
de HA); GHAMg (grupo com defeito ósseo preenchido com microesferas de MgHA) e GC (grupo
controle com defeito ósseo sem implante de biomaterial). Os animais foram avaliados
15 e 45 dias após a cirurgia. A técnica cirúrgica utilizada foi a mesma descrita por
Miguel et al.[12] e ilustrada por Santos et al.[2] Porém, vale ressaltar que, nestes estudos, o defeito ósseo tinha aproximadamente
8,0 mm de diâmetro, mas aqui tinha cerca de 5,0 mm[13] ([Fig. 1]).
Fig. 1 Etapas cirúrgicas para criação de um defeito ósseo não crítico. (A) Região da calvária após tricotomia e antissepsia; (B) retalho rebatido após incisão semilunar bicoronal na pele para exposição do tecido
ósseo; (C) demarcação do defeito ósseo na porção mediana da calvária; e (D) defeito ósseo não crítico criado.
Processamento Histológico e Análise Histomorfológica
Nos pontos biológicos de 15 e 45 dias, os animais foram eutanasiados com dose letal
de cetamina e xilazina. Em seguida, a porção superior da calvária foi removida, os
tecidos moles foram descartados e os espécimes foram fixados em formaldeído tamponado
a 4% por 7 dias. Após esta etapa, foram descalcificados em ácido nítrico 5% por 2
horas, embebidos em parafina e cortados com 5,0 μm de espessura. Os cortes histológicos
obtidos foram corados com hematoxilina-eosina (HE) e posteriormente examinados em
microscopia óptica padrão (DM1000–Leica Microsystems, Wetzlar, Alemanha) para análise
histomorfológica e morfométrica. Uma câmera digital (DFC 310 FX – Leica Camera AG,
Wetzlar, Alemanha) acoplada a um microscópio óptico comum (DM1000–Leica) e ao software
QWin 3.1 (Leica) mediu a área da matriz mineralizada recém-formada nos 3 grupos experimentais.
Posteriormente, foi realizada análise estatística com base na média e no desvio-padrão
para obtenção do valor de p, com nível de significância de 5% (p < 0,05), por meio de análise de variância (ANOVA).
Resultados
Análise Histomorfológica
Aos 15 dias, o GHA apresentou neoformação de matriz osteoide associada às bordas ósseas
e de modo circunjacente à algumas microesferas, que se organizavam predominantemente
em monocamada e ocupavam toda a extensão do defeito ósseo, mantendo a espessura proporcional
às bordas ([Fig. 2A]). Osteócitos e osteoblastos ativos estavam associados a esta matriz. Observou-se
formação de tecido conjuntivo e inflamação crônica discreta com infiltrado inflamatório
mononuclear e células gigantes multinucleadas, principalmente ao redor das microesferas,
entre as áreas mineralizadas e as microesferas ([Fig. 2B]).
Fig. 2 Fotomicrografia do grupo com defeito preenchido com microesferas de hidroxiapatita
(GHA) – 15 e 45 dias. Notar as microesferas (M) distribuídas em camada única ou dupla,
com formação de matriz osteoide (*) em quase toda a extensão do defeito, com presença
de osteócitos (OCs) e organizadas em lamelas ósseas concêntricas; tecido conjuntivo
(CT) frouxo na área residual do defeito ósseo, com presença de células inflamatórias
(Ci) mononucleares e células gigantes multinucleadas (seta amarela). Abreviaturas:
Be, borda óssea; HE, hematoxilina-eosina. 15 dias (A,B). 45 dias (C,D).
No ponto biológico de 45 dias, as microesferas no GHA estavam distribuídas principalmente
em multicamadas. A matriz osteoide neoformada ficou mais evidente que aos 15 dias
e preencheu, em média, 4/5 do defeito ósseo no sentido centrípeto, circundado pelo
biomaterial ([Fig. 2C]). As microesferas próximas às bordas estavam circundadas pela matriz osteoide recém-formada,
com muitos osteoblastos ativos, osteócitos e algumas lamelas concêntricas ([Fig. 2D]). Na área residual, notou-se a formação de tecido conjuntivo de aspecto mais denso
que no ponto biológico anterior, com presença de vasos sanguíneos e resposta inflamatória
granulomatosa crônica discreta.
No GHAMg, aos 15 dias, com os biomateriais, notou-se neoformação da matriz osteoide
no sentido centrípeto, mais evidente na região periférica do defeito ([Fig. 3A]). Assim como no GHA, os biomateriais preencheram todo o defeito ósseo, com espessura
proporcional às bordas, e dispostos em monocamada. Osteoblastos ativos e numerosos
osteócitos foram observados em associação à matriz osteoide. As demais áreas estavam
preenchidas por tecido conjuntivo frouxo repleto de vasos sanguíneos ([Fig. 3B]) e infiltrado inflamatório granulomatoso crônico de aspecto moderado, principalmente
circundando as microesferas.
Fig. 3 Fotomicrografia do grupo com defeito ósseo preenchido com microesferas de hidroxiapatita
substituída por magnésio (GHAMg) – 15 dias e 45 dias. Observam-se microesferas (M)
distribuídas em monocamada, permeadas por matriz osteoide recém-formada (*), em sentido
centrípeto, e por tecido conjuntivo (CT), rico em vasos sanguíneos (seta preta). Abreviaturas:
BE, borda óssea; V, veia central; HE, hematoxilina-eosina. 15 dias (A,B). 45 dias (C,D).
No ponto biológico de 45 dias no GHAMg, a neoformação óssea permeada pelas microesferas
estendeu-se de forma centrípeta e confluente, preenchendo aproximadamente 2/3 da extensão
linear do defeito ([Fig. 3C]). Além disso, notou-se que as microesferas localizadas próximas às bordas estavam
circundadas por neoformação osteoide rica em osteócitos. Na área residual, houve nova
formação de tecido conjuntivo, mais organizado que aos 15 dias, e grande número de
capilares sanguíneos ([Fig. 3D]).
O GC, aos 15 dias, apresentou neoformação óssea com aspecto reacional associado às
bordas, com osteoblastos e osteócitos ativos. Na área remanescente, notou-se deposição
de tecido conjuntivo frouxo, com espessura reduzida, abundante em células fusiformes
e vasos sanguíneos ([Fig. 4A]). Aos 45 dias, a nova formação óssea estendeu-se além da borda em direção centrípeta,
mais evidentemente do que aos 15 dias ([Fig. 4B]). A inflamação crônica observada foi discreta e escassa. A reparação tecidual foi
completada com formação de tecido conjuntivo na região e ausência de mineralização.
Fig. 4 Fotomicrografia do grupo controle (GC) – 15 e 45 dias. Note a neoformação da matriz
osteoide (*) em direção centrípeta, com espessura reduzida nas bordas ósseas (BEs)
e área residual preenchida por tecido conjuntivo (CT). Abreviatura: HE, hematoxilina-eosina.
15 dias (A) e 45 dias (B).
Análise Histomorfométrica
O estudo histomorfométrico não apresentou diferenças estatisticamente significativas
entre os 3 grupos avaliados aos 15 dias ao analisar a área da matriz osteoide recém-formada.
No ponto biológico de 45 dias, notou-se significância estatística ao comparar o GHAMg
e o GHA com o GC, sendo que este último grupo apresentou maior média de matriz osteoide
recém-formada ([Tabela 1]).
Tabela 1
|
Grupo
Tempo
|
GHAMg
|
GHA
|
GC
|
Valor de p (entre grupos)
|
Comparação GHAMg x GHA
|
Comparação de GC com GHAMg e GHA
|
|
15 dias
|
25% (±29)
|
12% (±7)
|
20% (±38)
|
p = 0,58 NS
|
p = 0,55 NS
|
GHAMg: p = 0,89 NS
GHA: p = 0,82 NS
|
|
45 dias
|
20% (±13)
|
25% (±11)
|
61% (±21)
|
p = 0,01 S
|
p = 0,92 NS
|
GHAMg: p = 0,01 S
GHA: p = 0,02 S
|
Discussão
Modelos experimentais in vivo são referência há muitas décadas em diferentes tipos de estudos e diversas áreas
do conhecimento. Para avaliar biomateriais destinados à regeneração óssea, esses modelos
devem apresentar características anatômicas e fisiológicas que possibilitem a compreensão
dos fenômenos naturais para determinar o potencial osteogênico dos materiais investigados.
Assim, dentre as diferentes possibilidades de estudos, destaca-se o defeito ósseo
criado na calvária de ratos, que apresenta acesso e manipulação cirúrgica fáceis,
baixo custo e boa previsibilidade e reprodutibilidade.[14] Portanto, este estudo avaliou o reparo de defeitos ósseos não críticos após implantação
de microesferas de HA com substituição por Mg.
O procedimento cirúrgico para criação desse defeito promoveu dano tecidual e, consequentemente,
ruptura vascular que provocou extravasamento sanguíneo e formação de coágulos, seguida
de liberação de citocinas que desencadearam resposta inflamatória. Essa inflamação
granulomatosa crônica, discreta e regressiva ao longo do estudo, está de acordo com
o que ocorre após a implantação in vivo de um biomaterial.[15]
[16] Esses achados estão de acordo com aqueles observados por Santos et al.,[2] Santos et al.,[4] Miguel et al.,[12] Daltro et al.,[13] Almeida et al.[17] e Ribeiro et al.[18] Esses autores avaliaram diferentes tipos de biomateriais para regeneração óssea
em calvária de ratos e descreveram a mesma resposta tecidual.
Durante os eventos fisiológicos que ocorrem na regeneração óssea, além da liberação
de citocinas e mediadores químicos, há a secreção de fatores de crescimento, diferenciação
celular e angiogênicos que estimulam a formação de tecido conjuntivo rico em novos
vasos sanguíneos, com consequente desenvolvimento de tecido de granulação e deposição
de matriz osteoide, que posteriormente se torna mineralizada. Em todos os pontos biológicos,
tais características histomorfológicas foram observadas nos três grupos avaliados
em nosso estudo. Aos 45 dias, no GC, a neoformação de tecido mineralizado foi de aproximadamente
60%. Porém, no GHA e no GHAMg, esse percentual foi de 25 e 20%, respectivamente. Essa
diferença na neoformação óssea nos dois grupos com implantação de biomaterial em relação
ao GC decorre da presença de microesferas no defeito ósseo, uma vez que estas foram
sinterizadas e, consequentemente, não reabsorvidas devido à sinterização do material,
um procedimento que promove alterações na rede cristalina da HA com fusão dos cristais.[19] Assim, nos grupos GHA e GHAMg, as microesferas ocuparam grande parte da área seccional
do defeito e formaram uma estrutura tridimensional ao longo da extensão linear e altura
do defeito ósseo.
Vale ressaltar que embora alguns autores sugiram e defendam algumas metodologias como
padrão, ainda não há consenso na literatura sobre qual diâmetro exato do defeito ósseo
deve ser considerado não crítico ou crítico. Um defeito ósseo “crítico” foi definido
como aquele que não se regenera ao longo da vida do animal[20] ou do estudo.[21] Nestes casos, o reparo é completado por fibrose e a nova formação óssea fica restrita
às bordas.[4]
[12]
[17]
[18] Essa situação não foi observada no presente estudo, em que o novo tecido mineralizado
se formou de maneira centrípeta ao longo dos pontos biológicos, com regeneração de
quase toda a área do defeito no GC aos 45 dias. Esses achados contrastam com os obtidos
por autores que classificam esse defeito ósseo de 5,0 mm como crítico.[22]
[23]
[24]
No que se refere à regeneração óssea, um arcabouço tridimensional (3D) é essencial
para os eventos celulares e vasculares observados durante este mecanismo. Portanto,
biomateriais cerâmicos têm sido amplamente estudados para esse fim em diferentes formas
de apresentação e composição. Os avanços científicos e tecnológicos vivenciados nas
últimas décadas têm possibilitado cada vez mais o desenvolvimento de materiais com
características físico-químicas biomiméticas voltadas para a estimular a neoformação
óssea. Dentre esses materiais, a HA tem sido amplamente pesquisada devido à sua biocompatibilidade,
semelhança com componentes naturais da fase mineral do tecido ósseo, osteocondutividade,
bioatividade[1]
[3] e ausência de toxicidade e imunogenicidade. Nosso estudo observou tais características
nos dois grupos submetidos à implantação dos biomateriais, nos dois pontos biológicos,
o que permitiu a formação de uma matriz osteoide e tecido conjuntivo entre e ao redor
das microesferas.
A estrutura hexagonal da HA realiza trocas iônicas nos sítios Ca2+ e HPO4
3− com elementos ou grupos funcionais que fazem parte naturalmente da composição óssea
para alterar a cristalinidade, solubilidade, biodegradação e, consequentemente, as
propriedades biológicas do biomaterial após a implantação in vivo.[4]
[25]
[26] O Mg se destaca por desempenhar um papel fundamental no metabolismo e crescimento
ósseo: a deficiência desse elemento inibe a atividade dos osteoblastos, enquanto favorece
a sobrevida e a atuação dos osteoclastos.[27]
[28] Além disso, a presença de Mg contribui para a biomineralização, principalmente na
fase inicial da osteogênese: aumenta a cinética de nucleação da HA, retarda sua cristalização
e pode interferir nas alterações qualitativas da matriz óssea.[29] Isso provavelmente explica por que a média de formação óssea aos 15 dias foi maior
no GHAMg do que no GHA, mas sem diferenças estatisticamente significativas. Apesar
disso, esse padrão não se repetiu após 45 dias e a formação média de matriz osteoide
foi semelhante entre esses grupos.
O Mg também tem efeito essencial na promoção da angiogênese, na estimulação das células
endoteliais e na produção de fatores de crescimento vascular,[30] o que pode justificar a presença de vasos sanguíneos mais evidentes no GHAMg do
que nos demais grupos ao longo do estudo. Além disso, a incorporação deste metal na
estrutura da HA promoveu uma ligeira diminuição na cristalinidade do biomaterial sem
prejudicar a biodegradação da cerâmica, provavelmente devido à sinterização.
A biocompatibilidade e bioatividade dos biomateriais aqui estudados demonstram que
esses materiais podem ser utilizados em futuras aplicações clínicas, em especial como
biomaterial de preenchimento. Diante dos resultados obtidos neste trabalho, novos
estudos deverão analisar estes biomateriais sem tratamento térmico (sinterização)
e com outras variações na concentração de Mg em defeitos críticos (8,0 mm) e não críticos
(5,0 mm) para melhor caracterizar o potencial osteogênico destas cerâmicas com substituição
por este metal.
Conclusões
Os biomateriais avaliados neste estudo são biocompatíveis, osteocondutores e bioativos.
O Mg substituído na HA estimulou a maior formação óssea apenas na fase inicial do
reparo ósseo (15 dias), com formação de matriz osteoide de forma semelhante entre
as cerâmicas na fase final do estudo.
