Zusammenfassung
Hintergrund: In der rekonstruktiven Chirurgie besteht hoher Bedarf an Knorpelersatzmaterialien.
Dazu steht autologes Gewebe nur begrenzt zur Verfügung. Andererseits kann die Verwendung
von Implantaten zu Entzündungsreaktionen führen. Durch Maskierung mit autologen Zellen
sollte die Biokompatibilität von porösem Polyethylen verbessert werden. Die Funktionalisierung
der Oberfläche erfolgte mit Kollagen, um den Kontakt zwischen Polyethylen und der
Zellschicht zu intensivieren. Methoden: Die in unterschiedlicher Weise funktionalisierten Polyethylenoberflächen wurden charakterisiert
und in Zellkulturexperimenten mit primären humanen Chondrozyten auf ihre Gewebeverträglichkeit
untersucht. Ergebnisse: Durch ein In-vitro-Screening konnten verschiedene modifizierte Polyethylenoberflächen
auf ihre Eignung als Knorpelersatzmaterial getestet werden. Die Kollagenbeschichtung
von modifizierten Polyethylenoberflächen führte zu einer Verbesserung der Überlebensraten
von primären Chondrozyten, unabhängig von der Art der Bindung des Kollagens an die
Polyethylenoberfläche. Schlussfolgerungen: Chondrozyten können auf Polyethylenoberflächen kultiviert werden. Die Ergebnisse
müssen tierexperimentell überprüft werden.
Abstract
Background: Reconstructive surgery needs high requirements of substitutes for cartilages. The
availability of autologous material is limited. The use of implants can cause inflammatory
reactions. Therefore the biocompatibility of porous polyethylene should be improved
by masking the synthetic surface with autologous cells. The polyethylene surface was
functionalized by collagen, in order to enhance the contact between polyethylene and
the surrounding cells. Methods: The modified surfaces were characterized and tested by an in vitro screening with
primary human chondrocytes. Results: The modification of polyethylene surfaces by collagen coating increased the life
time of chondrocytes growing at this surface. The effect was independent of the former
functionalization. Conclusions: It is possible to cultivate chondrocytes on polyethylene surfaces. The results have
to be proven in a long-term animal experimental study.
Schlüsselwörter
Tissue-Engineering - Plasmabehandlung - Kollagen - MEDPOR® - Polyethylen
Key words
tissue engineering - plasma treatment - collagen - MEDPOR® - polyethylene
Literatur
1
Sittinger M, Bräunling J, Kastenbauer E, Hammer C, Burmester G, Bujia J.
Untersuchungen zum Vermehrungspotentialvon Nasenseptum-Chondrozyten für die In-vitro-Züchtung
von Knorpeltransplantaten.
Laryngo-Rhino-Otol.
1997;
76
96-100
2
Bujia J, Rotter N, Minuth W, Burmester G, Hammer C, Sittinger M.
Züchtung menschlichen Knorpelgewebes in einer dreidimensionalen Perfusionskulturkammer:
Charakterisierung der Kollagensynthese.
Laryngo-Rhino-Otol.
1995;
74
559-563
3
Haisch A, Schultz O, Perka C, Jahnke V, Burmester G, Sittinger M.
Tissue-engineering humanen Knorpelgewebes für die rekonstruktive Chirurgie unter Verwendung
biokompatibler resorbierbarer Fibringel und Polymerfliesstrukturen.
HNO.
1996;
44
624-629
4
Von der Mark K.
Differentiation modulation and dedifferentiation of chondrocytes.
Rheumatol.
1986;
10
272-315
5
Bujia J, Reitzel T, Sittinger M.
In-vitro-Züchtung von Knorpelgewebe für die rekon-struktive Chirurgie: Einfluß von
L(+)-Laktat und Glykaolat auf kultivierte humane Chondrozyten.
Laryngo-Rhino-Otol.
1995;
74
183-187
6
Perka C, Schultz O, Sittinger M, Zippel H.
Chondrozytentransplantation in PGLA/Polydioxanon-Vliesen.
Der Orthopäde.
2000;
29
112-119
7
Claes L, Ignatius A.
Entwicklung neuer biodegradabler Implantate.
Chirurg.
2002;
73
990-996
8
Alini M, Li W, Markovic P, Aebi M, Spiro R, Roughley P J.
The potential and limitations of a cell-seeded Collagen/Hyaluronan scaffold to engineer
an invertebral disc- like matrix.
Spine.
2003;
28
446-453
9
Vats A, Tolley N S, Polak J M, Gough J E.
Scaffold and Biomaterials for tissue engineering: a review of clincal applications.
Clin Otolaryngol.
2003;
28
165-172
10
Cancedda R, Dozin B, Giannoni P, Quarto R.
Tissue engineering and cell terapy of cartilage and bone.
Matrix Biology.
2003;
22
81-91
11
Berghaus A.
Porous polyethylene in reconstructive head and neck surgery.
Arch Otolaryngol.
1985;
111
154-160
12
Berghaus A.
Alloplastische Implantate in der Hals-Nasen-Ohrenheilkunde, Kopf- und Halschirurgie.
Arch Otorhinolaryngol.
1992;
Suppl I
52-95
13
Patel P J, Rees H C, Olver J M.
Fibrovascularisation of Porous Polyethylene Orbital Floor Implants in Humans.
Arch Ophtalmol.
2003;
121
400-403
14
Romo T, Choe K, Sclafani A.
Cleft Lip Nasal Reconstruction Using Porous High-Density Polyethylene.
Arch of Facial Plastic Surgery.
2003;
5
175-179
15
Zhang D, Hu B, Shu C.
Surgical reconstruction of the abnormalities of earlap, canal and middle ear at one
time.
Lin Chuang Er Bi Yan Hou Ke Za Zhi.
2003;
17
27-29
16
Praveen J, Patel M A, Rees H C, Olver J M.
Fibrovascularization of Porous Polyethylene Orbital Floor Implants in Humans.
Arch Ophthalmol.
2003;
121
400-403
17
Carboni A, Gasparini G, Perugini M, Renzi G, Matteini C, Becelli R.
Evaluation of homologous bone graft versus biomaterials in the aest restoration of
the middle third of the face.
Minerva Chir.
2002;
57
283-287
18
Ozturk S, Sengezer M, Coskun U, Zor F.
An unusual complication of a Medpor implant in nasal reconstruction - case report.
Aesthetic Plast Surg.
2002;
26
419-22
19
Yaremchuk M J.
Facial skeletal reconstruction using porous polyethylene implants.
Plast Reconstr Surg.
2003;
111
1818-27
20
Sosna A, Radonsky T, Pokorny D, Veigl D, Horak Z, Jahoda D.
Polyethylene disease.
Acta Chir Orthop Traumatol Cech.
2003;
70
6-16
21
Blaydon S M, Shepler T R, Neuhaus R W, White W L, Shore J W.
The porous polyethylene (Medpor) sperical orbital implant: a retrospective study of
136 cases. Ophthal Plast Reconstr.
Surg.
2003;
19
364-371
22
Schwenzer K, Codoni S, Stübinger S, Jundt G, Zeihofer H F.
Komplikationen und orofaziale Rehabilitation nach Insertion alloplastischer Kieferwinkel-Augmentate
- ein Fallbericht.
J DGPW.
2004;
30
19-23
23 Dayss E, Leps G, Meinhardt J, Wutzler A.
Biokompatible Polymerschichten. In: Leps G, Kausche H (Hrsg). 40 Jahre Werkstofftechnik Merseburg. Merseburg;
1999: 84-93
24 Harlow E, Lane D. Antibodies A Laboratory Manual. Cold Spring Harbour laboratory
1988
25 Plein P. Plasmapolymerisation. Köln; Verlag TÜV Rheinland 1989
26 Freshney R I. Tierische Zellkulturen. Berlin, New York; Walter de Gruyter 1990
27
Minuth W W, Schumacher K, Strehl R, Kloth S.
Physiological and cell biological aspects of perfusion culture technique employed
to generate differentiated tissues for long-term biomaterial testing and tissue engineering.
J Biomater Sci Polym.
2000;
11
495-522
28 Romeis B. Mikroskopische Technik. München-Wien-Baltimore; Urban und Schwarzenberg
1989
29
Dell’Accio F, De Bari C, Luyten F P.
Microenvironment and phenotypic stability specif tissue formation by human articular
cartilage-derived cells in vivo.
Exp Cell Res.
2003;
287
16-27
30
Angele P, Abke J, Kujat R, Faltermeier H, Schumann D, Nerlich M, Kinner B, Englert C,
Ruszcak Z, Mehrl R, Mueller R.
Influence of different collagen species on physico-chemical properties of crosslinked
collagen matrices.
Biomaterials.
2004;
25
2831-2841
31
Nehrer S, Breinan H A, Ramappa A, Young G, Shortkroff S, Louie L K, Sledge C B, Yannas I V,
Spector M.
Matrix collagen type and pore size influence behavier of seeded canine Chondrozytes.
Biomaterials.
1997;
18
769-776
32
Bosetti M, Reno F, Bracco P, Costa L, Cannas M.
Ultra-high molecular weight polyethylene oxidation reduces metalloproteinase 2 secretion
in human osteoblast-like cells in vitro: A mechanism of modulation of extracellular
matrix.
J Biomed Mater Res.
2003;
64
698-705
33
Reno F, Lombardi F, Cannas M.
UHMWPE oxidation increases granulocytes activation: a role in tissue response after
prosthesis implant.
Biomaterials.
2003;
24
2895-2900
34
Reno F, Bracco P, Lombardi F, Boccafoschi F, Costa L, Cannas M.
The induction of MMP-9 release from granulocytes by Vitamin E in UHMWPE.
Biomaterials.
2004;
25
995-1001
35
Langner R, Tirrell D A.
Designing materials for biology and medicine.
Nature.
2004;
428
487-492
36
Shakibaei M, De Souza P, Merker H J.
Integrin Expression and Collagen Type II implicated in maintenance of Chondrocyte
Shape in monolayer culture: an immunological study.
Cell Biol Int.
1997;
21
115-125
37
Lee C R, Grodzinsky A J, Hsu H-P, Spector M.
Effects of a cultured autologous chondrocytes-seeded type II collagen scaffold on
the healing of a chondral defect in a canine model.
J Orthop Res.
2003;
21
272-281
38
Strehl R, Tallheden T, Sjögren-Jansson E, Minuth W W, Lindahl A.
Long-term maintenance of human articular cartilage in culture for biomaterial testing.
Biomaterials.
2005;
26
4540-4549
39
Ikada Y.
Surface Modification of Biomedical Polymers.
Macromol Symp.
1996;
101
455-462
40 Ratner B D, Hoffman A, Schoen F, Lemons J. Biomaterials Science: An Introduction
to Materials in Medicine, 2nd ed. Amsterdam; Elsevier 2004: 373
41
Miller R R, McDevitt C A.
A quantitative microwell assay for chondrocyte cell adhesion.
Anal Biochem.
1991;
192
380-383
Dr. med. E. Röpke
Klinik und Poliklinik für Hals-, Nasen-, Ohrenheilkunde, Kopf- und Halschirurgie,
Martin-Luther-Universität Halle-Wittenberg
Magdeburger Straße 12 06097 Halle/Saale
eMail: ernst.roepke@medizin.uni-halle.de