Z Orthop Ihre Grenzgeb 2006; 144(3): 289-295
DOI: 10.1055/s-2006-933446
Kniegelenk

© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Expressionsanalyse verschiedener Kollagene und Zytokine in Knorpelzellen aus arthrotisch veränderten Hüft- und Kniegelenken

Expression Analysis of Different Collagens and Cytokines in Cartilage Cells Derived from Arthrotic Hip and Knee JointsM. Hoberg1 , W. K. Aicher1 , N. Wülker1 , M. Rudert1
  • 1Klinik für Orthopädie, Universitätsklinikum Tübingen
Further Information

Publication History

Publication Date:
04 July 2006 (online)

Zusammenfassung

Studienziel: Die Arthrose ist gekennzeichnet durch eine zunehmende Zerstörung des Gelenkknorpels mit einem Überwiegen des katabolen Stoffwechsels. Die Prävalenz der Arthrose in einzelnen Gelenken ist jedoch sehr unterschiedlich, erzielt für das Hüft- und Kniegelenk jedoch sehr ähnliche Werte. Ob sich dieses Bild auch auf Zell- und molekularer Ebene bestätigen ließ, war Ziel unserer Untersuchungen. Hierzu wurde die vergleichende Analyse von Chondrozyten makroskopisch intakter Areale aus arthrotisch veränderten Knie- und Hüftgelenken hinsichtlich ihrer Expression von entzündungs-assoziierten Genen, wie IL-1β, IL-1β-Rezeptorantagonist, iNOS und Komponenten der Knorpelmatrix (Kollagen I, II, und VI) sowie Vimentin durchgeführt. Methode: Verschiedene Zytokine und Proteine konnten durch immunhistochemische Untersuchungen sowie quantitative RT-PCR-Analysen in den Knorpelzellen aus OP-Präparaten arthrotisch veränderter Knie- und Hüftgelenke nachgewiesen werden. Ergebnisse: Knorpelzellen aus Knie- und Hüftgelenken mit arthrotischen Veränderungen exprimieren die Kollagene I, II und VI, IL-1β, IL-1β-RA, iNOS und Vimentin mit Erhöhung der Expression von Kollagen I gegenüber II bei zunehmender Kulturdauer. Ein signifikanter Expressionsunterschied zwischen Chondrozyten aus arthrotisch veränderten Hüft- und Kniegelenken wurde ex vivo oder in Primärkultur nicht gefunden. Die IL-1β-Expression ist in beiden Gelenken massiv erhöht. Im Vergleich stieg sie signifikant in Chondrozyten aus dem Hüftgelenk gegenüber Zellen aus dem Kniegelenk nur in der ersten Passage an. Schlussfolgerung: Es besteht eine große Ähnlichkeit zwischen arthrotisch verändertem Knorpel aus Hüft- und Kniegelenk. Die geringen Unterschiede in der Expression der Kollagene und Entzündungsmediatoren zeigen eine physiologische Ähnlichkeit dieser Chondrozyten, die mit einer erhöhten Anfälligkeit, eine Arthrose zu entwickeln, assoziiert sein könnte. Weitere vergleichende Studien mit Zellen des Sprunggelenkes sollen diese Hypothese überprüfen.

Abstract

Aim: Osteoarthritis (OA) is characterized by an irreversible destruction of articular cartilage. This is associated with a multiplicity of factors, causing an increased catabolic metabolism in cartilage. However, the prevalence of the OA is very variable in different joints. Therefore, we conducted a comparative analysis of chondrocytes derived from knee and hip joints with respect to their expression of inflammatory factors, such as IL-1β, IL-1β-receptorantagonist, iNOS, components of cartilage matrix (collagen I, II, and VI) as well as vimentin. Methods: Different cytokines and proteins were detected by immune-histochemical staining of cartilage samples ex vivo. Further, chondrocytes were isolated from OA knee and hip joints, expanded in vitro and gene expression patterns were investigated by quantitative RT-PCR. Results: Chondrocytes from knee and hip joints of OA patients express collagenes I, II and VI, IL-1β and IL-1β-RA, iNOS as well as Vimentin. A significant difference in gene expression patterns was not found in chondrocytes from the hip joints versus the knee joint ex vivo or in primary culture cells in vitro. However, in vitro the expression of type I collagen exceeded the expression of type II collagen. The IL-1β-expression was high ex vivo, remained low during primary culture but was significantly elevated after primary culture in hip chondrocytes. Conclusion: Osteoarthritic gene expression patterns in cells derived from hip or knee joints ex vivo and in primary culture were not significantly different. We conclude that the rather frequent occurrence of OA in these joints in comparison to the ankle joint may be associated with a close physiological relation of cells in these joints. However, future studies which will include ankle cartilage must be investigated in further detail.

Literatur

  • 1 Sun Y, Sturmer T, Gunther K P, Brenner H. [Incidence and prevalence of cox- and gonarthrosis in the general population].  Z Orthop Ihre Grenzgeb. 1997;  135 184-192
  • 2 Danielsson L, Lindberg H. Prevalence of coxarthrosis in an urban population during four decades.  Clin Orthop Relat Res. 1997;  342 106-110
  • 3 De F L, Gulli S, Caliri A, Romano C, Munao F, Trimarchi G, La T D, Fichera C, Pappalardo A, Triolo G, Gallo M, Valentini G, Bagnato G. [Epidemiology and risk factors in osteoarthritis: literature review data from “OASIS” study].  Reumatismo. 2004;  56 169-184
  • 4 Eger W, Schumacher B L, Mollenhauer J, Kuettner K E, Cole A A. Human knee and ankle cartilage explants: catabolic differences.  J Orthop Res. 2002;  20 526-534
  • 5 Dingle J T, Horner A, Shield M. The sensitivity of synthesis of human cartilage matrix to inhibition by IL-1 suggests a mechanism for the development of osteoarthritis.  Cell Biochem Funct. 1991;  9 99-102
  • 6 Smith J B, Bocchieri M H, Sherbin-Allen L, Borofsky M, Abruzzo J L. Occurrence of interleukin-1 in human synovial fluid: detection by RIA, bioassay and presence of bioassay-inhibiting factors.  Rheumatol Int. 1989;  9 53-58
  • 7 Vuolteenaho K, Moilanen T, Hamalainen M, Moilanen E. Regulation of nitric oxide production in osteoarthritic and rheumatoid cartilage. Role of endogenous IL-1 inhibitors.  Scand J Rheumatol. 2003;  32 19-24
  • 8 Kobayashi M, Squires G R, Mousa A, Tanzer M, Zukor D J, Antoniou J, Feige U, Poole A R. Role of interleukin-1 and tumor necrosis factor alpha in matrix degradation of human osteoarthritic cartilage.  Arthritis Rheum. 2005;  52 128-135
  • 9 Stremme S, Duerr S, Bau B, Schmid E, Aigner T. MMP-8 is only a minor gene product of human adult articular chondrocytes of the knee.  Clin Exp Rheumatol. 2003;  21 205-209
  • 10 Capin-Gutierrez N, Talamas-Rohana P, Gonzalez-Robles A, Lavalle-Montalvo C, Kouri J B. Cytoskeleton disruption in chondrocytes from a rat osteoarthrosic (OA) -induced model: its potential role in OA pathogenesis.  Histol Histopathol. 2004;  19 1125-1132
  • 11 Gouttenoire J, Valcourt U, Ronziere M C, Aubert-Foucher E, Mallein-Gerin F, Herbage D. Modulation of collagen synthesis in normal and osteoarthritic cartilage.  Biorheology. 2004;  41 535-542
  • 12 Grunder T, Gaissmaier C, Fritz J, Stoop R, Hortschansky P, Mollenhauer J, Aicher W K. Bone morphogenetic protein (BMP)-2 enhances the expression of type II collagen and aggrecan in chondrocytes embedded in alginate beads.  Osteoarthritis Cartilage. 2004;  12 559-567
  • 13 Gruber J, Vincent T L, Hermansson M, Bolton M, Wait R, Saklatvala J. Induction of interleukin-1 in articular cartilage by explantation and cutting.  Arthritis Rheum. 2004;  50 2539-2546
  • 14 Fan Z, Bau B, Yang H, Soeder S, Aigner T. Freshly isolated osteoarthritic chondrocytes are catabolically more active than normal chondrocytes, but less responsive to catabolic stimulation with interleukin-1 beta.  Arthritis Rheum. 2005;  52 136-143
  • 15 Binette F, McQuaid D P, Haudenschild D R, Yaeger P C, McPherson J M, Tubo R. Expression of a stable articular cartilage phenotype without evidence of hypertrophy by adult human articular chondrocytes in vitro.  J Orthop Res. 1998;  16 207-216
  • 16 Miosge N, Hartmann M, Maelicke C, Herken R. Expression of collagen type I and type II in consecutive stages of human osteoarthritis.  Histochem Cell Biol. 2004;  122 229-236
  • 17 Marlovits S, Hombauer M, Truppe M, Vecsei V, Schlegel W. Changes in the ratio of type-I and type-II collagen expression during monolayer culture of human chondrocytes.  J Bone Joint Surg [Br]. 2004;  86 286-295
  • 18 Pullig O, Weseloh G, Swoboda B. Expression of type VI collagen in normal and osteoarthritic human cartilage.  Osteoarthritis Cartilage. 1999;  7 191-202
  • 19 Aigner T, Zien A, Gehrsitz A, Gebhard P M, McKenna L. Anabolic and catabolic gene expression pattern analysis in normal versus osteoarthritic cartilage using complementary DNA-array technology.  Arthritis Rheum. 2001;  44 2777-2789
  • 20 Tetlow L C, Adlam D J, Woolley D E. Matrix metalloproteinase and proinflammatory cytokine production by chondrocytes of human osteoarthritic cartilage: associations with degenerative changes.  Arthritis Rheum. 2001;  44 585-594
  • 21 Wang J, Verdonk P, Elewaut D, Veys E M, Verbruggen G. Homeostasis of the extracellular matrix of normal and osteoarthritic human articular cartilage chondrocytes in vitro.  Osteoarthritis Cartilage. 2003;  11 801-809
  • 22 Palmer G, Guerne P A, Mezin F, Maret M, Guicheux J, Goldring M B, Gabay C. Production of interleukin-1 receptor antagonist by human articular chondrocytes.  Arthritis Res. 2002;  4 226-231

Dr. med. M. Hoberg

Klinik für Orthopädie · Universitätsklinikum Tübingen

Hoppe-Seyler-Straße 3

72076 Tübingen

Phone: 0 70 71/2 98 66 85

Fax: 0 70 71/29 50 41

Email: Maik.Hoberg@med.uni-tuebingen.de

    >