Aktuelle Dermatologie 2001; 27(8/9): 273-278
DOI: 10.1055/s-2001-17291
ORIGINALARBEIT
© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Serum Inhibin B als ein Marker der Spermatogenese

Inhibin B as Marker of SpermatogenesisUta-Christina Hipler, B. Hochheim, B. Knöll, J. Tittelbach, G. Schreiber
  • Klinik für Hautkrankheiten der Friedrich-Schiller-Universität Jena (Direktor: Prof. Dr. P. Elsner)
Further Information

Publication History

Publication Date:
19 September 2001 (online)

Zusammenfassung

Inhibin B wird von Sertolizellen produziert und reguliert die FSH-Sekretion über einen negativen Feedback. Beim Mann scheint Inhibin B die physiologisch bedeutsame Form zu sein. Wir bestimmten Serum-Inhibin B unter Verwendung eines zwei-Seiten-immunoenzymatischen Assays bei 40 Normalpersonen (Alter: 27,37 ± 0,83 Jahre, Mittelwert ± Standardfehler) mit einer Spermienkonzentration von 100,0 ± 9,2 × 106/ml, bei 51 subfertilen Patienten (30,86 ± 0,94 Jahre) mit einer Spermienkonzentration von 6,8 ± 0,8 × 106/ml, bei Männern mit Varikozele (n = 16) mit einer Spermienkonzentration von 54,3 ± 17,1 × 106/ml und einem Alter von 30,69 ± 1,52 Jahren, sowie von Männern mit Kallmann-Syndrom, Klinefelter-Syndrom, obstruktiver und nicht obstruktiver Azoospermie. Wir verglichen Serum-Inhibin-B-Konzentrationen mit Serum FSH- und Spermienkonzentration. Bei Männern mit normaler Spermienkonzentration (> 20 × 106/ml) betrugen die Konzentrationen von Inhibin B im Serum 201,5 ± 17,1pg/ml und von FSH 4,1±0,5 IU/l. Die Patienten mit Varikozele zeigen ebenfalls eine Spermienkonzentration > 20 × 106/ml und liegen mit ihren Serum-Inhibin-B-Werten im Bereich von 173,7 ± 21,3pg/ml; die FSH-Werte liegen bei 4,6 ± 0,6 IU/l. Bei Patienten mit Spermienkonzentrationen < 20 × 106/ml betrug die Inhibin-B-Konzentration 118,2 ± 14,8 pg/ml und die FSH-Konzentration lag bei 10,1 ± 1,1 IU/l. Bei allen Patienten, außer jenen mit hypogonadotropem Hypogonadismus und Klinefelter-Syndrom, war die Korrelation zwischen Inhibin B und FSH invers (r = - 0,41, P > 0,01). Die Spermienzahl korrelierte positiv mit den Serum-Inhibin-B-Konzentrationen (r = 0,340, P < 0,01). Eine Korrelation von r = 0,574, P < 0,05 ergab sich bei der Gruppe mit Varikozele. Aus den Untersuchungen lässt sich schlussfolgern, dass Inhibin B ein Marker der exokrinen testikulären Funktion ist und eine sehr wesentliche Hilfe zur Diagnosestellung testikulärer Funktionsstörungen darstellt.

Inhibin B as Marker of Spermatogenesis

Inhibin B generated by Sertoli cells provides negative feedback on FSH secretion. In men, inhibin B seems to be the physiologically important form of inhibin. Therefore we measured serum inhibin B using a new two-site immunoenzymatic assay in 40 healthy men (age 27.37 ± 0.83 years (mean ± SEM) with sperm concentrations 100.0 ± 9.2 × 106/ml, in 51 subfertile men (30.86 ± 0.94 years) with sperm concentrations 6.8 ± 0.8 × 106/ml, in men with varicocele (n = 16) with sperm concentrations 54.3 ± 0.8 × 106/ml (30.6 ± 1.5 years) and in men with hypogonadotrophic hypogonadism, Klinefelter syndrome, in men with obstructive and non-obstructive azoospermia. We compared serum inhibin B concentrations with serum FSH and sperm concentrations. In men with normal sperm concentrations (> 20 × 106/ml) we measured serum inhibin B concentrations 201.5 ± 17.1pg/ml and the FSH concentrations 4.1 ± 0.5 IU/L. The varicocele patients showed normal sperm concentrations > 20 × 106/ml and the serum inhibin B (173.7 ± 21.3 pg/ml) and the FSH values (4.6 ± 0.6 IU/L) we obtained were in the same range, respectively. In patients with sperm concentrations < 20 × 106/ml the concentration of inhibin B was 118.2 ± 14.8 pg/ml and the FSH concentration was 10.1±1.1IU/L. In all patients, except those with hypogonadotrophic hypogonadism and Klinefelter syndrome, the inhibin B and FSH correlated inversely (r = - 0.41, P > 0.01). A positive correlation between inhibin B and sperm concentrations could be shown (r = 0.34, P < 0.01). In the varicocele group a correlation of r = 0.574, P < 0.05 was found. We conclude that inhibin B may be regarded as a marker of exocrine testicular function and could offer an improved diagnosis of testicular disorders.

Literatur

  • 1 Allenby G, Foster P M, Sharpe R M. Evaluation of changes in secretion of immunoactive inhibin by adult rat seminiferous tubules in vitro as an indicator of early toxicant action on spermatogenesis.  Fundam Appl Toxicol. 1991;  16 710-724
  • 2 Anawalt B D, Bebb R A, Matsumoto A M. Serum inhibin B level reflects sertoli cell function in normal men and men with testicular dysfunction.  J Clin Endocriol Metab. 1996;  81 3341-3345
  • 3 Bergmann M, Behre H M, Nieschlag E. Serum FSH and testicular morphology in male infertility.  Clin Endocrinol. 1994;  40 133-136
  • 4 Carroll R S, Kowash P M, Lofgren J A, Schwall R H, Chin W W. In vivo regulation of FSH synthesis by inhibin and activin.  Endocrinology. 1991;  129 3299-3304
  • 5 Crofton P M, Illingworth P J, Groome N P, Stirling H F, Swanston J, Gow S, Wu F CW, Mc Neilly A, Kelnar C JH. Changes in dimeric Inhibin A during normal early puberty in boys and girls.  Clin Endocrinol. 1997;  46 109-114
  • 6 De Kretser D M, McFarlane J R. Inhibin in the male.  J Androl. 1996;  17 179-182
  • 7 Groome N P, O’Brien M. Immunoassays for inhibin and its subunits. Further applications of the synthetic peptide approach.  J Immunol Method. 1993;  165 167-176
  • 8 Groome N P, O’Brien M. Preparation and applications of monoclonal antibodies to inhibin and its subunits.  Frontiers in Endocrinol. 1994;  3 33-44
  • 9 Hasegawa Y, Miyamoto K, Sugino H, Takio K, Inoue M, Ibuki Y. Progress with Human and Rat Inhibin Characterization. In: Burger HG, Findleay J, Robertson D, De Kretser DM, Petraglia F Inhibin and Inhibin Related Proteins. Ares Serono Symposia Publications 1994
  • 10 Illingworth P J, Groome N P, Bryd W. Inhibin-B: A likely candidate for the physiologically important form of inhibin in man.  J Clin Endocrinol Metab. 1996;  81 1321-1325
  • 11 Jensen T K, Anderson A M, Hjollund N HI. Inhibin B as a serum marker of spermatogenese: correlation to differences in sperm concentration and follicle-stimulating hormone levels. A study of 349 Danish men.  J Clin Endocrinol Metab. 1997;  82 4059-4063
  • 12 Kitahara S, Kotsuji F, Keeping H S, Oshima H, Troen P, Winter S J. Interrelationship between the actions of testosterone and primate sertoli cell inhibin in the control of gonadotropin secretion by cultured pituitary cells.  Endocrinology. 1991;  128 710-716
  • 13 Klaij J A, van Pelt A M, Timmermann M A, Blok L J, de Rooij D G, de Jong F H. Expression of inhibin subunit mRNA’s and inhibin levels in the testes of rats with stage-synchronized spermatogenesis.  J Endocrinol. 1994;  141 131-141
  • 14 Klingmüller D, Haidl G. Inhibin B in men with normal and disturbed spermatogenesis.  Human Reproduction. 1997;  12 2376-2378
  • 15 Knight P G, Muuttukrishna S. Measurement of dimeric inhibin using a modified two site immunoradiometric assay specific for oxidized (Met O) inhibin.  J Endocrinol. 1994;  141 417-425
  • 16 McCullagh D R. Dual endocrine activity of testes.  Science. 1932;  76 17-20
  • 17 Pierik F H, Vreeburg J TM, Stijnen T, De Jong F H, Weber R FA. Serum Inhibin B as a Marker of Spermatogenesis.  J Clin Endocrinol Metab. 1998;  83 3110-3114
  • 18 Robert J, Wolley M D. Contraception - A Look Forward. Part III: Inhibin and Brain - Enhanced Estrogen Delivery.  J Am Board Fam Pract. 1991;  4 159-166
  • 19 Robertson D, Burger H G, Sullivan J. Biochemical and immunological characterization of inhibin forms in human plasma.  J Clin Endocrinol Metab. 1996;  81 669-676
  • 20 Robertson D M, Sullivan J, Watson M, Cahir N. Inhibin forms in human plasma.  J Endocrinol. 1955;  144 261-269
  • 21 Simpon B J, Hedger M P, DeKretser D M. Characterization of adult Sertoli cell cultures from cryptorchid rats: inhibin secretion in response to follicle-stimulating hormone stimulation.  Mol Cell Endocrinol. 1992;  87 167-177
  • 22 WHO-Laborhandbuch zur Untersuchung des menschlichen Ejakulates und der Spermien-Zervikalschleim-Interaktion, 3. Auflage. Springer 1993

Dr. Uta-Christina Hipler

Klinik für Dermatologie
Friedrich-Schiller-Universität

Erfurter Straße 35
07740 Jena


Email: chip@derma.uni-jena.de

    >