Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2004; 32(04): 191-195
DOI: 10.1055/s-0038-1623556
Wiederkäuer
Schattauer GmbH

PregSure® BVD – eine neue inaktivierte BVD-Vakzine

Breite Kreuzneutralisation von europäischen BVDV-Typ-1- und -Typ-2-Stämmen und signifikante Verbesserung der Fertilität nach TestinfektionenA new BVDV type I inactivated vaccine (PregSure® BVD)Broad cross neutralisation of type I and type II BVDV strains and significant improvement of pregnancy rates
J. S. Salt
1   Pfizer Animal Health, Biologicals R & D, Sandwich, UK
,
A. F. G. Antonis
2   Animal Sciences Group, Division of Infectious Diseases/ Department Infection Biology, Lelystad, The Netherlands
,
A. R. Peters
1   Pfizer Animal Health, Biologicals R & D, Sandwich, UK
,
Annette Brune
3   Pfizer GmbH, Direktionsbereich Tiergesundheit, Karlsruhe
,
S. Jahnecke
3   Pfizer GmbH, Direktionsbereich Tiergesundheit, Karlsruhe
,
W. Traeder
3   Pfizer GmbH, Direktionsbereich Tiergesundheit, Karlsruhe
,
Silke S. Harmeyer
1   Pfizer Animal Health, Biologicals R & D, Sandwich, UK
› Author Affiliations
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Publication History

Publication Date:
05 January 2018 (online)

Zusammenfassung

Gegenstand und Ziel: Ziel dieser Arbeit war, die Eignung des neuen BVD-Impfstoffes PregSure® BVD für den Einsatz in Europa mittels In-vitro-Kreuzneutralisationstests zu untersuchen sowie dessen Schutzwirkung gegenüber Fertilitätsverlusten nach Testinfektionen mit BVDV zu bestimmen. Material und Methoden: Für die In-vitro-Kreuzneutralisation wurden Seren von 20 Färsen drei Wochen nach Abschluss der Grundimmunisierung (zwei Impfungen im Abstand von 21 Tagen) entnommen. Die Serumneutralisationstests erfolgten unter Verwendung eines Panels von verschiedenen vorwiegend europäischen BVDV-Typ-1- und -Typ-2-Stämmen. Für die Untersuchungen zur Schutzwirkung auf die Fertilität wurden Färsen im Alter von 14-39 Monaten entweder grundimmunisiert (s. o.) oder blieben als Kontrolle unbehandelt. Nach Brunstsynchronisation fand eine instrumentelle Samenübertragung an zwei aufeinander folgenden Tagen statt. Im ersten Experiment wurden alle Tiere einer intranasalen Testinfektion mit zwei heterologen BVDV-Typ-1-Stämmen unterzogen. Bei den Probanden aus dem zweiten Experiment erfolgte dagegen eine Testinfektion mit jeweils einem BVDV Typ 1 und Typ 2. Neunundsechzig bis 72 Tage nach der Testinfektion wurden die Färsen geschlachtet und deren Feten untersucht. Ergebnisse: Alle Färsen hatten nach der Grundimmunisierung mit Preg- Sure® BVD serumneutralisierende Antikörpertiter gegen alle getesteten europäischen BVDV-Typ-1- oder -Typ-2-Stämme entwickelt. Im ersten Experiment zur Fertilität betrugen die Trächtigkeitsraten nach einer doppelten Testinfektion mit zwei verschiedenen BVDV-Typ-1-Stämmen 95,5% in der Impfgruppe gegenüber nur 40,9% in der Kontrollgruppe. Im zweiten Experiment ließ sich eine partielle Kreuzprotektion gegen eine schwere BVDV-Typ-2-Testinfektion mit Trächtigkeitsraten von 47,6% in der Impfgruppe gegenüber nur 4,4% in der Kontrollgruppe nachweisen. Schlussfolgerung und klinische Relevanz: Anhand der breiten Kreuzneutralisationsaktivität gegen verschiedene europäische BVD-Virusisolate konnte die Eignung des Impfstammes von PregSure® BVD für den Einsatz in Europa demonstriert werden. Weiterhin zeigen die Ergebnisse aus den Fertilitätsstudien, dass PregSure® BVD zusätzlich zu dem per Zulassung gewährleisteten fetalen Schutz einen Schutz vor BVDV-bedingten Fertilitätsverlusten bei Zuchtrindern zu induzieren vermag.

Summary

Objective: Aim of the present study was to demonstrate the relevance of the vaccine strain of a new BVD vaccine, PregSure® BVD, for its use in Europe. Furthermore the vaccine’s ability to protect from pregnancy losses due to an early infection with BVDV after artificial insemination was determined. Material and methods: The immune sera used in the in-vitro cross neutralisation were collected from 20 heifers three weeks after the completion of the primary vaccination schedule with PregSure® BVD (two vaccinations given 21 days apart). The BVDV cross-neutralising activity of these postvaccinal sera was tested by virus neutralisation employing a panel of different predominantly European BVDV type I and II strains. Furthermore, two fertility studies were carried out, where heifers between 14 and 39 months of age were primovaccinated with PregSure® BVD or left untreated as control, respectively. All animals had their oestrus cycles synchronised and were artificially inseminated. Four days after the initial artificial insemination and again three days later, all animals of experimental group 1 were challenged intranasally with two heterologous noncytopathic BVDV type I strains, whereas animals from group 2 received a type I and a type II BVDV strain. Sixty-nine to 72 days after the challenge, all dams were slaughtered and their foetuses collected. Differences in pregnancy rates between the vaccinated and the control group were assessed and then analysed using Fisher’s Exact Test. Results: Heifers vaccinated with a novel inactivated BVDV vaccine containing a cytopathic BVDV type I strain 5960, were shown to have serum neutralising antibody titres between 5.5 to 12.3 log2 against all BVDV strains tested, three weeks after the completion of their primary vaccination course. In the first fertility experiment, pregnancy rates assessed 69-72 days after a double challenge with two different BVDV type I strains were 95.5% in the vaccinated group versus only 40.9% in the control group. A level of cross-protection against a severe BVDV type II challenge was shown in the second experiment with pregnancy rates of 47.6% in the vaccinated group and only 4.4% in the control group. Conclusions and clinical relevance: The broad cross neutralising activity shown in this study demonstrates the relevance of the vaccine strain 5960 for use in Europe. Furthermore as shown with significantly improved pregnancy in the two fertility experiments, PregSure® BVD vaccinated heifers are protected against fertility losses caused by acute BVDV infections.

 
  • Literatur

  • 1 Becher P, König M, Thiel H-J. Bovine Virusdiarrhö und Mucosal Disease: Molekularbiologie des Erregers, Pathogenese, Labordiagnostik und Bekämpfung. Tierärztl Prax 2001; 29 (G): 266-75.
  • 2 Beer M, Wolf G. Selection of BVDV genotype II isolates using a monoclonal antibody and FACS analysis. Berl Münch Tierärztl Wschr 1999; 112: 345-50.
  • 3 Beer M, Wolf G. Impfstoffe zum Schutz gegen eine Infektion mit dem Virus der Bovinen Virusdiarrhoe/Mucosal Disease (BVD/MD): Eine kurze Übersicht. Berl Münch Tierärztl Wschr 2003; 116: 252-8.
  • 4 Fairbanks K, Schnackel J, Chase CC. Evaluation of a modified live virus type-1a bovine viral diarrhoea virus vaccine (Singer strain) against a type-2 (strain 890) challenge. Vet Ther 2003; 4: 24-34.
  • 5 Fulton RW, Ridpath JF, Confer AW, Saliki JT, Burge LJ, Payton ME. Bovine viral diarrhoea virus antigenic diversity: impact on disease and vaccination programmes. Biologicals 2003; 31: 89-95.
  • 6 Hamers C, Couvreur B, Dehan P, Letellier C, Fischer L, Brun AJ, Lewalle P, Mischaux C, Pastoret PP, Kerkhofs P. Assessment of the clinical and virological protection provided by a commercial inactivated bovine viral diarrhoea virus genotype 1 vaccine against a BVDV genotype 2 challenge. Vet Rec 2003; 153: 236-40.
  • 7 Houe H. Economic impact of BVDV infection in dairies. Biologicals 2003; 31: 137-43.
  • 8 König M, Sedillo Rosales S, Becher P, Thiel HJ. Heterogenität ruminanter Pestiviren: Akademisches Interesse oder wichtige Grundlage für die Entwicklung von Impfstoffen und Diagnostika?. Berl Münch Tierärztl Wschr 2003; 116: 216-21.
  • 9 Kuchenbuch S. Reproductive management in dairy heifers: Comparison of timed artificial insemination and insemination on observed estrus. Diss med vet. Freie Universität; Berlin: 2002
  • 10 Moerman A, Straver PJ, de Jong MC, Quak J, Baanvinger T, van Oirschot JT. Clinical consequences of a bovine virus diarrhoea virus infection in a dairy herd: a longitudinal study. Vet Quart 1994; 16: 115-9.
  • 11 Paton DJ, Sharp G, Ibata G. Foetal cross-protection experiments between type 1 and type 2 bovine viral diarrhoea virus in pregnant ewes. Vet Microbiol 1999; 64: 185-96.
  • 12 Robert A, Beaudeau F, Seegers H, Joly A, Philipot JM. Large scale assessment of the effect associated with bovine viral diarrhoea virus infection on fertility of dairy cows in 6149 herds in Brittany (Western France). Theriogenology 2004; 61: 117-27.
  • 13 Tajima M, Frey HR, Yamato O, Maede Y, Moennig V, Scholz H, Greiser-Wilke I. Prevalence of genotypes 1 and 2 of bovine viral diarrhea virus in Lower Saxony, Germany. Virus Res 2001; 76: 31-42.
  • 14 Vilcek S, Paton DJ, Durkovic R, Strojny L, Ibata G, Moussa A, Loitsch A, Rossmanith W, Vega S, Scicluna MT, Palfi V. Bovine viral diarrhoea virus genotype 1 can be separated into at least eleven genetic groups. Arch Virol 2001; 146: 99-115.
  • 15 Wolfmeyer A, Wolf G, Beer M, Strube W, Hehnen HR, Schmeer N, Kaaden OR. Genomic (5’UTR) and serological differences among German BVDV field isolates. Arch Virol 1997; 142: 2049-57.