Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2014; 42(01): 32-39
DOI: 10.1055/s-0038-1623202
Originalartikel
Schattauer GmbH

Profile von Estron, Estronsulfat und Progesteron während der Trächtigkeit beim Esel (Equus asinus)

Profiles of estrone, estrone sulfate and progesterone in donkey (Equus asinus) mares during pregnancy
B. Hoffmann
1   Klinik für Geburtshilfe, Gynäkologie und Andrologie der Groß- und Kleintiere mit Tierärztlicher Ambulanz, Justus-Liebig-Universität Gießen
,
A. W. Bernhardt
1   Klinik für Geburtshilfe, Gynäkologie und Andrologie der Groß- und Kleintiere mit Tierärztlicher Ambulanz, Justus-Liebig-Universität Gießen
,
K. Failing
2   Zentrale Abteilung Biomathematik und Datenverarbeitung, Fachbereich Veterinärmedizin, Justus-Liebig-Universität Gießen
,
G. Schuler
1   Klinik für Geburtshilfe, Gynäkologie und Andrologie der Groß- und Kleintiere mit Tierärztlicher Ambulanz, Justus-Liebig-Universität Gießen
› Author Affiliations
Further Information

Publication History

Eingegangen: 27 June 2013

Akzeptiert nach Revision: 24 September 2013

Publication Date:
05 January 2018 (online)

Zusammenfassung

Ziel: Erhalt weiterführender Daten zur endokrinen Kontrolle der Gravidität beim Esel und von Referenzwerten zur hormonellen Graviditätsdiagnostik. Material und Methodik: In monatlichen Abständen gewonnene Blutproben stammten von 23 Eselstuten mit normal verlaufenden Einlingsgraviditäten. Weiterhin wurden Proben von sechs Stuten mit klinischen Auffälligkeiten gewonnen. Die Bestimmung von Progesteron (P4), Gesamt-Estron (GE), freiem und konjugiertem Estron (E und ES) erfolgte mittels radioimmunologischer Verfahren. Ergebnisse: Die Trächtigkeitsdauer betrug im Mittel 372 ± 16 Tage; sie war bei Groß- und Normaleseln mit 375,9 ± 5,7 bzw. 385,8 ± 20,7 Tagen länger als bei Minieseln (357,4 ± 5,7 Tage, p < 0,05) und wies eine negative Korrelation (p = 0,043) zum Alter der Stute auf. Die P4-Werte schwankten in der 2.–5. Trächtigkeitswoche (TW) zwischen ca. 12 und 35 ng/ml, wonach sich bei acht Stuten die Anbildung der Copora lutea auxiliaria (CLA) durch einen steilen Anstieg der P4-Konzentration auf ca. 40–110 ng/ml in der 12.–17. TW zeigte. Der nachfolgende Abfall führte zu Werten zwischen 5 und 16 ng/ml bis zur ca. 46. Woche. Bei den meisten Stuten kam es zu einem geringen Anstieg zur Geburt. Die GE-Konzentrationen lagen bis zur 6. TW bei < 1 ng/ml, stiegen danach auf ca. 600–2700 ng/ml in der Mitte der Gravidität und fielen auf ca. 1–20 ng/ml in den letzten beiden TW ab. Der Verlauf von E und ES war mit p < 0,0001 korreliert, die E-Konzentration war bis zu 1000-mal niedriger als die von ES. Aus den Hormonverläufen er gaben sich keine eindeutigen Hinweise auf die beobachteten klinischen Auffälligkeiten. Schlussfolgerung: Der Verlauf der P4-Konzentration entspricht weitgehend der Situation beim Pferd. Bei den Östrogenen fehlt der beim Pferd charakteristische Anstieg von ES in Verbindung mit der Anbildung der CLA, ansonsten ergibt sich eine weitgehende Übereinstimmung. Rassespezifische Unterschiede zeigten sich nur bezüglich der Trächtigkeitsdauer. Klinische Relevanz: Die hormonelle Graviditätsdiagnostik beim Esel konnte auf eine solide Basis gestellt werden. Eine GE Konzentration > 5 ng/ml lässt mit hoher Wahrscheinlichkeit auf eine vorliegende Gravidität schließen. Ein hormonelles Graviditätsmonitoring als präventive Maßnahme ist derzeit noch nicht möglich.

Summary

Objectives: To gain further data on the hormonal control of pregnancy in the donkey and to obtain reference values for hormonal pregnancy testing. Material and methods: Blood samples were collected at monthly intervals from 23 donkey mares with normal singleton pregnancies. Further samples were obtained from six mares displaying pregnancies with clinical disorders. Progesterone (P4), total estrone (TE), free (E) and conjugated estrone (ES) were determined using radioimmunoassay. Results: Mean duration of pregnancy was 372 ± 16 days. It was longer (p < 0.05) in large (375.9 ± 5.7 days) and standard (385.8 ± 20.7 days) donkeys than in miniature donkeys (357.4 ± 5.7 days) and negatively correlated to the age of the mare (p = 0.043). P4-concentrations varied between 12–35 ng/ml during weeks 2–5 of pregnancy and increased thereafter in eight jennies concomitant with the formation of the secondary corpora lutea (sCL), reaching values of 40–110 ng/ml during weeks 12–17. The decrease observed thereafter resulted in concentrations between 5–16 ng/ml until week 46, followed by a slight increase in most of the mares prior to parturition. Concentrations of TE remained < 1 ng/ml until week 6. They increased thereafter to 600–2700 ng/ml during midpregnancy and displayed a decrease to 1–20 ng/ml during the last 2 weeks of pregnancy. The course of E and ES was correlated (p < 0.0001) and E concentrations were up to 1000 times lower than those of ES. The course of hormone concentrations did not provide any clear indications in relation to the observed clinical disorders. Conclusion: The course of P4-concentrations resembles largely the situation in the horse. In contrast to the horse, the course of ES does not show an increase concomitant with the formation of the sCL. Breed-specific effects became apparent regarding pregnancy duration. Clinical relevance: Hormonal pregnancy diagnostic in the jenny could be put on a solid basis with TE values > 5 ng/ml being indicative for pregnancy. At present, monitoring of P4 and estrone during pregnancy does not allow the prediction of clinical disorders.

 
  • Literatur

  • 1 Aggarwal BB, Farmer SW, Papkoff H, Stewart F, Allen WR. Purification and characterization of donkey chorionic gonadotrophin. J Endocrinol 1980; 85: 449-455.
  • 2 Allen WR, Stewart F. The biology of pregnant mare serum gonadotrophin (PMSG). In: Control of Reproduction in the Cow. Sreenan JR. ed. The Hague, Boston, London: Martinus Nijhoff; 1978: 50-72.
  • 3 Asdell S. Patterns of Mammalian Reproduction. 2nd edn.. Ithaca, N.Y: Comstock, Cornell University Press; 1964
  • 4 Bauer HR. Pferde-, Esel-, Maultier-, Maulesel-, Zebra- und Mischlingszuchten in den Tropen und Subtropen. Tropenpflanzer 1941; 44: 196-234.
  • 5 Bernhardt AW. Konzentrationen von Sexualsteroiden im Blutplasma männlicher und weiblicher Esel. Diss. med. vet. Gießen: 2012. http://geb.uni-giessen.de/geb/volltexte/2012/8793/
  • 6 Borwick R. Esel halten. Stuttgart: Ulmer; 1984: 1-224.
  • 7 Chopineau M, Stewart F, Allen WR. Cloning and analysis of the cDNA encoding the horse and donkey luteinizing hormone beta-subunits. Gene 1995; 160: 253-256.
  • 8 Cox JE. Oestrone and equilin in the plasma of the pregnant mare. J Reprod Fertil Suppl. 1975; 23: 463-468.
  • 9 Fielding D. Reproductive characteristics of the jenny donkey – Equus asinus: a review. Trop Anim Health Prod 1988; 20: 161-166.
  • 10 Flade JE. Der Hausesel. Wittenberg: Ziemsen; 1990: 1-124.
  • 11 Fowden AL, Forhead AJ, Ousey JC. The endocrinology of equine parturition. Exp Clin Endocrinol Diabetes 2008; 116: 393-403.
  • 12 Ginther OJ, Scraba ST, Bergfelt DR. Reproductive seasonality of the jenney. Theriogenology 1987; 27: 587-592.
  • 13 Grzimek B, Heck H, Volf J. Einhufer oder Pferdeverwandte. In: Grzimeks Tierleben Band 12 – Säugetiere 3. Grzimek B. Hrsg. München: Deutscher Taschenbuch Verlag; 1979: 541-582.
  • 14 Harris DG. Mules and donkeys. In: The UFAW Handbook on the Care and Management of Farm Animals. University Federation for Animal Welfare (UFAW). ed. Edingburgh, London: Churchchill Livingstone; 1971: 193-196.
  • 15 Henry M, Figueiredo AE, Palhares MS, Coryn M. Clinical and endocrine aspects of the oestrous cycle in donkeys (Equus asinus). J Reprod Fertil Suppl 1987; 35: 297-303.
  • 16 Hoffmann B, Kyrein HJ, Ender ML. An efficient procedure for the determination of progesterone by radioimmunoassay applied to bovine peripheral plasma. Horm Res 1973; 4: 302-310.
  • 17 Hoffmann B, Höveler R, Hasan SH, Failing K. Ovarian and pituitary function in dogs after hysterectomy. J Reprod Fertil 1992; 96: 837-845.
  • 18 Hoffmann B, Gentz F, Failing K. Investigations into the course of progesterone-, oestrogen- and eCG-concentrations during normal and impaired pregnancy in the mare. Reprod Domest Anim 1996; 32: 717-723.
  • 19 Hoffmann B, Leiser R, Schuler G. Physiologie und Anatomie der Trächtigkeit, Trächtigkeitsdiagnostik. In: Reproduktionsmedizin beim Pferd. Gynäkologie – Andrologie – Geburtshilfe. Aurich C. Hrsg. Stuttgart: Parey in MVS Medizinverlage; 2009: 125-154.
  • 20 Holtan DW, Nett TM, Estergreen VL. Plasma progestins in pregnant, postpartum and cycling mares. J Anim Sci 1975; 40: 251-260.
  • 21 Holtan DW, Squires EL, Lapin DR, Ginther OJ. Effect of ovariectomy on pregnancy in mares. J Reprod Fertil Suppl 1979; 27: 457-463.
  • 22 Holtan DW, Houghton E, Silver M, Fowden AL, Ousey J, Rossdale PD. Plasma progestagens in the mare, fetus and newborn foal. J Reprod Fertil Suppl 1991; 44: 517-528.
  • 23 Kohli ML, Suri KR, Chatterji A. Studies on the gestation length and breeding age in donkey mares. Indian Vet J 1957; 34: 344-348.
  • 24 Kupfer M. The behavior of the ovary of equines during normal sexual functions. Reports of the Director of Veterinary Education and Research, Union of South Africa, Department of Agriculture, 13th and 14th Report. 1928: 1239-1270.
  • 25 Makawiti DW, Allen WE, Kilpatrick MJ. Changes in oestrone sulphate concentrations in peripheral plasma of Pony mares associated with follicular growth, ovulation and early pregnancy. J Reprod Fertil 1983; 68: 481-487.
  • 26 Meira C, Ferreira JC, Papa FO, Henry M. Ovarian activity and plasma concentrations of progesterone and estradiol during pregnancy in jennies. Theriogenology 1998; 49: 1465-1473.
  • 27 Nishikawa Y. Studies on reproduction in horses. Japan Racing Assoc Shiba Temuracho Minotoku Tokio 1959; 273-300.
  • 28 Oviedo MA. Reproductive management in donkeys. Denton, Texas: American Donkey & Mule Society, The Brayer; 1986
  • 29 Pashen RL, Allen WR. The role of the fetal gonads and placenta in steroid production, maintenance of pregnancy and parturition in the mare. J Reprod Fert Suppl 1979; 27: 499-509.
  • 30 Rossdale PD, Ousey JC, Cottrill CM, Chavatte P, Allen WR, McGladdery AJ. Effects of placental pathology on maternal plasma progestagen and mammary secretion calcium concentrations and on neonatal adrenocortical function in the horse. J Reprod Fertil Suppl 1991; 44: 579-590.
  • 31 Rossdale PD, McGladdery AJ, Ousey JC, Holdstock N, Grainger L, Houghton E. Increase in plasma progestagen concentrations in the mare after foetal injection with CRH, ACTH or betamethasone in late gestation. Equine Vet J 1992; 24: 347-350.
  • 32 Rossel S, Marshall F, Peters J, Pilgram T, Adams MD, O’Connor D. Domestication of the donkey: timing, processes, and indicators. Proc Natl Acad Sci USA 2008; 105: 3715-3720.
  • 33 Schuler G. Indirekte Graviditätsdiagnostik bei der Stute – Erfahrungen mit der Bestimmung des Estronsulfatgehaltes im Blutplasma und im Urin. Prakt Tierarzt 1998; 79: 43-49.
  • 34 Schuler G, Hoffmann B. Determination of conjugated oestrogens in maternal blood plasma and urine for pregnancy diagnosis and monitoring of fetal well-being in the mare. Pferdeheilk 1999; 15: 627-629.
  • 35 Veronesi MC, Panzani S, Govoni N, Kindahl H, Galeati G, Robbe D, Carluccio A. Peripartal plasma concentrations of 15-ketodihydro-PGF2, cortisol, progesterone and 17 -estradiol in Martina Franca jennies. Theriogenology 2011; 75: 752-759.
  • 36 Woodward SL, Ohmart RD. Habitat use and fecal analysis of feral burros (Equus asinus), Chemehuevi Mountains, California, 1974. J Range Manage 1976; 29: 482-485.