Impfung gegen BVD/MD: direkter Vergleich verschiedener Impfstoffe und Impfregime

M. König; L. Jöns-Anders; Ch. Förster; K. Fading; H.-P. Heckert; H.-J. Thiel

doi:10.1055/s-0037-1621081

Tierärztliche Praxis Ausgabe G: Großtiere / Nutztiere, Table of Contents

Tierarztl Prax Ausg G Grosstiere Nutztiere 2006; 34(05): 281-288
DOI: 10.1055/s-0037-1621081

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Impfung gegen BVD/MD: direkter Vergleich verschiedener Impfstoffe und Impfregime

Article in several languages: deutsch | English

M. König

¹Aus dem Institut für Virologie (Leiter: Prof. Dr. H.-J. Thiel), FB Veterinärmedizin, JLU Gießen

,

L. Jöns-Anders

²der Klinik für Klauentiere (Leiterin: Prof. Dr. K. Müller), FB Veterinärmedizin, FU Berlin

,

Ch. Förster

¹Aus dem Institut für Virologie (Leiter: Prof. Dr. H.-J. Thiel), FB Veterinärmedizin, JLU Gießen

,

K. Fading

³und der Arbeitsgruppe Biomathematik und Datenverarbeitung (Leiter: Dr. K. Failing), FB Veterinärmedizin, JLU Gießen

,

H.-P. Heckert

²der Klinik für Klauentiere (Leiterin: Prof. Dr. K. Müller), FB Veterinärmedizin, FU Berlin

,

H.-J. Thiel

¹Aus dem Institut für Virologie (Leiter: Prof. Dr. H.-J. Thiel), FB Veterinärmedizin, JLU Gießen

› Author Affiliations

Abstract

Zusammenfassung:

Gegenstand und Ziel: Die bovine Virusdiarrhö/Mucosal Disease( BVD/MD) stellt nach wievor eine der ökonomisch bedeutsamsten Virusinfektionen des Rindes dar. Aufgrund der hohen Prävalenz des Erregers und der geographischen Lage ist der Einsatzvon Impfstoffen bei der Bekämpfung der BVD/MD in Deutschland nach verbreiteter Ansicht derzeit unverzichtbar. Zentrale Bedeutung besitzt dabei der Schutz vor diapla- zentarer Übertragung des Virus. Eine Reihe von Impfstoffen gegen BVD/MD auf der Basis von vermehrungsfähigem Virus (“Lebendvakzinen”) bzw. inaktiviertem Virus (“Totvakzinen”) ist derzeit in Deutschland zugelassen, zum Teil mit dem Zusatz “fetaler Schutz”. Neben dem alleinigen Einsatz von “Lebend-” bzw. “Totvakzinen” werden beide Impfstoffarten auch kombiniert im Rahmen des so genannten zweistufigen Impfregimes verwendet. Ziel der vorliegenden Untersuchung war der Vergleich unterschiedlicher Impfstoffe und Impfregime. Material und Methoden: In einem Tierversuch wurden 60 Rinder mit unterschiedlichen Impfstoffen gegen BVD/MD immunisiert. Über einen Zeitraum von 10 Monaten wurden Serumproben der Tiere gewonnen und im Neutralisationstest gegen drei BVD-Testviren aus den Gruppen BVDV-1a,-1b und BVDV-2a getestet. Ergebnisse: Die zweimalige Immunisierung mit dem neuen Impfstoff PregSure^® BVD ergab vergleichbar hohe neutralisierende Antikörpertiter gegen BVDV-1 wie die Kombination von “Totimpfstoff” und “Lebendimpfstoff” im zweistufigen Verfahren. Hinsichtlich BVDV-2führte die zweimalige Impfung mit PregSure^® BVD sogar zu höheren Titern. Schlussfolgerungen: Es zeigte sich,dass der neue “Totimpfstoff” PregSure^® BVD auchfürden Einsatz im Rahmen zweistufiger Impfprogramme gut geeignet ist. Klinische Relevanz: Der alleinige Einsatz von “Totimpfstoffen” bietet praktische Vorteile. Wichtigstes Ziel aller Impfungen gegen BVD/MD bleibt der “fetale Schutz”.

Schlüsselwörter:

bovine Virusdiarrhö (BVD) - Mucosal Disease (MD) - Pestivirus - BVD - Virus - Impfungen gegen BVD/MD - zweistufiges Impfverfahren

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References

Literatur
1 Anonymus Leitlinien für den Schutz von Rinderbeständen vor einer Infektion mit dem Virus der Bovinen Virusdiarrhoe (BVDV) und für die Sanierung infizierter Bestände. In: Bundesanzeiger: Bundesministerium für Ernährung, Landwirtschaft und Forsten. Bundesministerium der Justiz; 1998: 1474-5.
2 Avalos Ramirez R, Orlich M, Thiel H-J, Becher P. Evidence for the presence of two novel pestivirus species. Virology 2001; 286: 456-65.
3 Baker JC. Bovine viral diarrhea virus: Areview. J Am Vet Med Assoc 1987; 190: 1449-58.
4 Becher P, König M, Thiel H-J. Bovine Virusdiarrhö und Mucosal Disease: Molekularbiologie des Erregers, Pathogenese, Labordiagnostik und Bekämpfung. Tierärztli Prax 2001; 29 (G) 266-75.
5 Becher P, Orlich M, Shannon AD, Horner G, König M, Thiel H-J. Phylogenetic analysis of pestiviruses from domestic and wild ruminants. J Gen Virol 1997; 78: 1357-66.
6 Bolin SR. Control of bovine viral diarrhoa infection by use of vaccination. VetClin North Am Food AnimPract 1995; 11: 615-25.
7 Bruschke CJ, van Oirschot JT, van Rijn PA. An experimental multivalent bovine virus diarrhea virus E2 subunit vaccine and two experimental conventionally inactivated vaccines induce partial fetal protection in sheep. Vaccine 1999; 17: 1983-91.
8 Casaro APE, Kendrick JW, Kennedy PC. Response of the bovine fetus to bovine viraldiarrhea-mucosaldisease virus. Am J Vet Res 1971; 32: 1543-62.
9 Cedillo Rosales S. Charakterisierung ruminanter Pestviren mittels Polymerasekettenreaktion und monoklonaler Antikörper. Diss, Justus-Liebig-Universität Gießen. 2004
10 Cedillo Rosales S, Becher P, Avalos Ramirez R, Thiel H-J, König M. Heterogenität ruminanter Pestiviren: Bedeutung für die Labordiagnostik und die Entwicklung von Impfstoffen. 21. Arbeits- und Fortbildungstagung des AVID Virologie. Kloster Banz: 2002
11 Corapi WV, Elliott RD, French TW, Dubovi EJ. Thrombocytopenia and hemorrhages in veal calves infected with bovine viral diarrhea virus. J Am Vet Med Assoc 1990; 196: 590-6.
12 Coria MF, McClurkin AW. Specific immunotolerance in an apparently healthy bull persistently infected with BVD virus. J AmVet Med Assoc 1978; 172: 449-51.
13 Dean HJ, Leyh R. Cross-protective efficacy of a bovine viral diarrhea virus (BVDV) type 1 vaccine against BVDV type 2 challenge. Vaccine 1999; 17: 1117-24.
14 Dixon WJ. ed. BMDP Statistical Software Manual, Volume 1 and 2. Berkeley, Los Angeles, London: University of California Press; 1993
15 Ellis J, West K, Cortese V, Konoby C, Weigel D. Effect ofmaternal antibodies on induction and persistence of vaccine-induced immune responses against bovine viral diarrhea virus type II in young calves. J Am Vet Med Assoc 2001; 219: 351-6.
16 Frey H-R, Eicken K. Untersuchungen über die Wirksamkeit einer inaktivierten BVD-Vakzine zur Erhöhung der Sicherheit einer BVD-Lebendvakzine. Tierärztl Umsch 1995; 50 (2) 86-93.
17 Frey H-R, Eicken K, Grummer B, Kenklies S, Oguzoglu TC, Moennig V. Foetal protection against bovine viral diarrhoea virus after two-step vaccination. J Vet Med B 2002; 49: 489-93.
18 Haas L, Kleine Büning M, Feldmann M, Hoedemaker M, Greiser-Wilke I, Moennig V. Bovine Virusdiarrhoe Virus Spezies 2 (BVDV2): eine Bedrohung auch für geimpfte Bestände?. Tierärztl Umsch 2004; 59: 495-9.
19 Hässig M, Egli C, Schalch L, Jacober R, Loepfe P, Valär G. et al. Fallbeschreibung einer Sanierung mit nachfolgender Vakzination in einer Milchvieherde mit BVD als Bestandsproblem. Tierärztl Prax 2005; 33 (G) 22-7.
20 Hofmann MJ. Risikoabschätzung für den Einsatz der BVDV-Lebendvakzine Oregon C24V nach vorheriger Applikation einer Vakzine aus inaktiviertem BVD-Virus: Laborstudie und Feldversuch. Diss, Ludwig-Maximilians-Universität München. 1998
21 Kaerber G. Beitrag zur kollektiven Behandlung pharmakologischer Reihenversuche. Arch Exp Pathol Pharmakol 1931; 162: 480.
22 Kahrs RF. Effects ofbovineviraldiarrheaonthedevelopping fetus. J Am Vet Assoc 1973; 163: 877-88.
23 König M, Cedillo Rosales S, Becher P, Thiel H-J. Heterogenität ruminanter Pestiviren: Akademisches Interesse oder wichtige Grundlage für die Entwicklung von Impfstoffen und Diagnostika?. Berl Münch Tierärztl Wschr 2003; 116: 216-21.
24 Liebler E, Johannsen U, Pohlenz J. Die hämorrhagische Verlaufsform der akuten Bovinen Virusdiarrhö: Literaturübersicht und Fallbericht. Tierärztl Prax 1995; 23: 18-25.
25 Liess B. Die ätiologische Abgrenzung selbständiger Virusinfektionen, insbesondere der Virusdiarrhoe-Mucosal Disease im sogenannten “Mucosal Disease Komplex” bei Rindern. Dtsch Tierärztl Wschr 1967; 74: 46-9.
26 Liess B, Orban S, Frey H-R, Trautwein G, Wiefel W, Blindow H. Studies on transplacental transmissibility of a bovine virus diarrhoea (BVD) vaccine virus in cattle. II. Inoculation of pregnant cows without detectable neutralizing antibodies to BVD virus 90-229 days before parturition (51stto 190th day of gestation). Zbl Vet Med B 1984; 31: 669-81.
27 Makoschey B, Janssen MG, Vrijenhoek MP, Korsten JH, Marel P. An inactivated bovine virus diarrhoea virus (BVDV) type 1 vaccine affords clinical protection against BVDV type 2. Vaccine 2001; 19: 3261-8.
28 Moennig V, Liess B. Pathogenesis of intrauterine infections with bovine viral diarrhea virus. VetClin North Am Food AnimPract 1995; 11: 477-8.
29 Patel JR, Shiletto RW, Williams J, Alexander DCS. Prevention of transplacental infection of bovine foetus by bovine viral diarrhoea virus through vaccination. Arch Virol 2002; 147: 2453-63.
30 Paton DJ, Sharp G, Ibata G. Foetal cross-protection experiments between type 1 and type 2 bovine viral diarrhoea virus in pregnant ewes. Vet Mic 1999; 64: 185-96.
31 Pellerin C, Van Den Hurk J, Lecomte J, Tijssen P. Identification of a new group of bovine viral diarrhea virus strains associated with severe outbreaks and high mortalities. Virology 1994; 203: 260-8.
32 Potgieter LND, McCracken MD, Hopkins FM, Guy JS. Comparison of pneu- mopathogenicity of two strains of bovine viral diarrhea virus. Am J Vet Res 1985; 46: 151-3.
33 Pritchard WR. The bovine viral diarrhea-mucosal disease complex. Adv Vet Sci 1963; 8: 1-47.
34 Richer L, Marois P, Lamontagne L. Association of bovine viral diarrhea virus with multiple viral infections in bovine respiratory disease outbreaks. CanVetJ 1988; 29: 713-7.
35 Shimazaki T, Nakamura S, Taguchi K, Inoue Y. Efficacyofbovine viral diarrhea vaccine used in Japan against bovine viral diarrhea virus type 2 strain 890. J Vet Med Sci 2003; 65: 263-6.
36 Tajima M, Frey H-R, Yamato O, Maede Y, Moennig V, Scholz H. et al. Preva- lance of genotypes 1 and 2 ofbovine viral diarrhea virus in Lower Saxony, Germany. Vet Mic 2001; 76: 31-42.
37 Thierauf P. Untersuchungen zur Epidemiologie, Diagnostik und Immunprophylaxe von BVD/MD-Virusinfektionen in Milchviehzuchtbeständen. Diss, Ludwig-Maximilians-Universität München. 1993
38 Vilcek S, Paton DJ, Durkovic B, Strojny L, Ibata G, Moussa A, et al. Bovine viral diarrhoea virus genotype 1 can be separated into at least eleven genetic groups. Arch Virol 2001; 146: 99-115.
39 Wolfmeyer A, Wolf G, Beer M, Strube W, Hehnen HR, Schmeer N. et al. Genomic (5'UTR) and serological differences among German BVDV field isolates. Arch Virol 1997; 142: 2049-57.
40 Zimmer GM, Wentink GH, Bruschke C, Westenbrink FJ, Brinkhof J, de Goey I. Failure of foetal protection after vaccination against an experimental infection with bovine virus diarrhea virus. Vet Mic 2002; 89: 255-65.