Tierarztl Prax Ausg K Kleintiere Heimtiere 2019; 47(05): 334-343
DOI: 10.1055/a-1002-0327
Originalartikel
© Georg Thieme Verlag KG Stuttgart · New York

Blutgasanalyse beim Kaninchen während einer vollständig antagonisierbaren Anästhesie unter besonderer Berücksichtigung des Sauerstoffmanagements

Blood gas analysis in rabbits during a completely antagonizable anesthesia with special focus on oxygen management
Tina Brezina
1   Klinik für Heimtiere, Reptilien, Zier- und Wildvögel, Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover, Hannover
,
Michael Fehr
1   Klinik für Heimtiere, Reptilien, Zier- und Wildvögel, Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover, Hannover
,
Milena Thöle
1   Klinik für Heimtiere, Reptilien, Zier- und Wildvögel, Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover, Hannover
2   Tierklinik Posthausen, Posthausen
› Author Affiliations
Further Information

Publication History

24 May 2019

31 July 2019

Publication Date:
18 October 2019 (online)

Zusammenfassung

Ziel Das Ziel dieser Studie war, die Auswirkung verschiedener Formen der Sauerstoffdarreichung auf die Werte der arteriellen Blutgasanalyse während einer Injektionsanästhesie darzustellen.

Material und Methoden Insgesamt 29 Kaninchen mit Zahnerkrankung (coronaler Überlänge) wurden vor, während und nach einer Okklusionskorrektur beprobt. Die Applikation von Sauerstoff erfolgte entweder per Flow-by-Methode oder über eine Sauerstoffbrille; in der Kontrollgruppe atmeten die Tiere Raumluft.

Ergebnisse Alle Patienten, die Sauerstoff erhalten hatten, entwickelten eine respiratorische Azidose, die sich über den Zeitraum der Anästhesie verstärkte. Zudem zeigten sie intraoperativ reduzierte Atemfrequenzen, aber dennoch erhöhte Sauerstoffparameter (Hyperoxämie) in der arteriellen Blutgasanalyse. Zwischen den beiden Methoden der Sauerstoffzufuhr ergab sich kein signifikanter Unterschied. In der Kontrollgruppe blieb der pH-Wert stabil, die Sauerstoffparameter sanken jedoch auf unter 80 mmHg (Hypoxämie).

Schlussfolgerung Obwohl es klinisch zu keiner sichtbaren Auswirkung der Hypoxämie oder Hyperoxämie kam, ist eine moderate Sauerstoffzufuhr während einer Injektionsanästhesie aufgrund der sich entwickelnden Hypoxämie empfehlenswert. Eine Balance zwischen Sauerstoffangebot und Überangebot sollte zukünftig ermittelt werden, um Schädigungen zu vermeiden.

Abstract

Objective The aim of this study was to evaluate the consequences of different oxygen supplementation methods on arterial blood gas analysis during an injectable anesthesia.

Material and methods A total of 29 rabbits with dental diseases (tooth elongation) were sampled before, during and after coronal reduction. Oxygen was provided either via the flow-by method or with a nasal oxygen tube; the control group breathed room air.

Results All patients receiving oxygen developed respiratory acidosis that intensified during the course of anesthesia. Furthermore, these groups experienced reduced respiratory rates intraoperatively, nevertheless they showed elevated oxygen parameters (hyperoxemia) in the arterial blood gas analysis. No significant differences could be demonstrated between the 2 oxygen providing methods. In the control group, pH remained stable, the oxygen parameters however decreased to less than 80 mmHg (hypoxemia).

Conclusions Although there were no clinical consequences of hypoxemia or hyperoxemia, moderate oxygen support during an injectable anesthesia is recommended due to the development of hypoxemia. A balance between oxygen supply and oversupply needs to be established to aid in avoiding oxygen toxicity.

 
  • Literatur

  • 1 Allweiler S, Leach MC, Flecknell P. The use of propofol and sevoflurane for surgical anaesthesia in New Zealand White rabbits. Lab Anim 2010; 44: 113-117
  • 2 Ardiaca M, Bonvehí C, Montesinos A. Point-of-care blood gas and electrolyte analysis in rabbits. Vet Clin North Am Exot Anim Pract 2013; 16 (01) 175-195
  • 3 Auckburally A, Nyman G. Review of hypoxaemia in anaesthetized horses: predisposing factors, consequences and management. Vet Anaesth Analg 2017; 44 (03) 397-408
  • 4 Barzago MM, Bortolotti A, Omarinin D. et al. Monitoring of blood gas parameters and acid base balance of pregnant and non-pregnant rabbits (Oryctolagus cuniculus) in routine experimental conditions. Lab Anim 1992; 26: 73-79
  • 5 Brezina T, Thöle M, Mischke R. et al. Referenzwerte für die arterielle Blutgasanalyse beim Kaninchen am Rapid Lab 348EX. Kleintierprax 2017; 62: 703
  • 6 Brodbeld DC, Blissitt KJ, Hammond RA. et al. The risk of death: the confidential enquiry into perioperative small animal fatalities. Vet Anaesth Analg 2008; 35 (05) 365-373
  • 7 DiBartola SP. Metabolic acid-base disorders. In: Fluid, Electrolyte and Acid-Base Disorders in Small Animal Practice. 4th ed.. DiBartola SP. ed. St. Louis: Elsevier Saunders; 2012: 253-286
  • 8 DiBartola SP. Respiratory acid-base disorders. In: Fluid, Electrolyte and Acid-Base Disorders in Small Animal Practice. 4th ed.. DiBartola SP. ed. St. Louis: Elsevier Saunders; 2012: 287-301
  • 9 Dunphy ED, Mann FA, Dodam JR. et al. Comparison of unilateral versus bilateral nasal catheters for oxygen administration in dogs. J Vet Emerg Crit Care 2002; 12 (04) 245-251
  • 10 Eatwell K, Mancinelli E, Hedley J. et al. Use of arterial blood gas analysis as a superior method for evaluating respiratory function in pet rabbits (Oryctolagus cuniculus). Vet Rec 2013; 173 (07) 166
  • 11 Egbrink MGA, Tangelder GJ, Slaaf DW. et al. Effect of blood gases and pH on thromboembolic reactions in rabbit mesenteric microvessels. Pflugers Arch 1989; 414: 324-330
  • 12 Erhardt W, Henke J, Tacke S. et al. Allgemeinanästhetika. In: Anästhesie und Analgesie beim Klein- und Heimtier mit Exoten, Labortieren, Vögeln, Reptilien, Amphibien und Fischen. 2. Aufl.. Erhardt W, Henke J, Haberstroh J. et al., Hrsg. Stuttgart: Schattauer; 2011: 17-110
  • 13 Fachgruppe Veterinärmedizinische Anästhesie, Intensivmedizin, Notfallmedizin und Schmerztherapie (VAINS) der Deutschen Veterinärmedizinischen Gesellschaft e. V.. Leitlinie Anästhesiologische Versorgung bei Hund und Katze. kleintier konkret 2016; 19 (04) 18-24
  • 14 Fleischmann T, Jirkof P, Henke J. et al. Injection anaesthesia with fentanyl-midazolam-medetomidine in adult female mice: importance of antagonization and perioperative care. Lab Anim 2016; 50 (04) 264-274
  • 15 Freeman BA, Topolosky MK, Crapo JD. Hyperoxia increases oxygen radical production in rat lung homogenates. Arch Biochem Biophys 1982; 216 (02) 477-484
  • 16 Gabriel S, Leopold-Temmler B. Zwergkaninchen als Zahnpatienten in der tierärztlichen Sprechstunde. Prakt Tierarzt 2002; 83 (03) 238-242
  • 17 Haberstroh J, Henke J, Baumgartner C. Kaninchen. In: Anästhesie und Analgesie beim Klein- und Heimtier mit Exoten, Labortieren, Vögeln, Reptilien, Amphibien und Fischen. 2. Aufl.. Erhardt W, Henke J, Haberstroh J. et al., Hrsg. Stuttgart: Schattauer; 2011: 688-702
  • 18 Harcourt-Brown F. Anaesthesia and Analgesia in rabbits. Proceedings 50° Congresso Nazionale Multisala SCIVAC, Rimini, Italia. 2005
  • 19 Henke J, Astner S, Brill T. et al. Comparative study of three intramuscular anaesthetic combinations (medetomidine/ketamine, medetomidine/fentanyl/midazolam and xylazine/ketamine) in rabbits. Vet Anaesth Analg 2005; 32 (05) 261-270
  • 20 Langenecker M, Clauss M, Hässig MR. et al. Vergleichende Untersuchung zur Krankheitsverteilung bei Kaninchen, Meerschweinchen, Ratten und Frettchen. Tierärztl Prax 2009; 37 (K): 326-333
  • 21 Lehmann AM. Vergleich einer intravenösen Ketaminnarkose mit einer intravenösen Alfaxalonnarkose beim Kaninchen [Dissertation]. Hannover: 2014
  • 22 Mach WJ, Thimmesch AR, Pierce JT. et al. Consequences of hyperoxia and the toxicity of oxygen in the lung. Nurs Pes Pract 2011; 2011: 260482
  • 23 Meredith A, Flecknell P. BSAVA Manual of Rabbit Medicine and Surgery. 2nd ed.. BSAVA; 2006: 1-17
  • 24 Mischke R. Reaktive Veränderungen des lymphatischen Systems (nichtmaligne Lymphknoten- und Milzerkrankungen). In: Praktikum der Hundeklinik. 12. Aufl.. Kohn B, Schwarz G. Hrsg. Stuttgart: Enke; 2017: 679-696
  • 25 Patel DN, Goel A, Agarwal SB. et al. Oxygen toxicity. J Indian Acad Clin Med 2003; 4 (03) 234-237
  • 26 Pfeiffer B, Syring RS, Markstaller K. et al. The implications of arterial PO2 oscillations for conventional arterial blood gas analysis. Anesth Analg 2006; 102: 1758-64
  • 27 Rousseau-Blass FRB, Pang DSJB. Oxygen-induced hypoventilation following alfaxalone-dexmedetomidine-midazolam sedation in New Zealand white rabbits. Proceedings AVA Spring Meeting. 2018
  • 28 Sakai H, Fukui M, Nakano Y. et al. Acute response of the lung mechanics of the rabbit to hypoxia. J Appl Physiol 1999; 86: 306-331
  • 29 Schmitz S, Tacke S, Guth B. et al. Comparison of physiological parameters and anaesthesia specific observations during isoflurane, ketaminexylazine or medetomidine-midazolam-fentanyl anaesthesia in male guinea pigs. PLoS One 2016; 11 (09) e0161258
  • 30 Sentürk M, Layer M, Pembeci K. et al. Oxygenierung während Ein-Lungen-Ventilation: Ein Vergleich von FiO2 0,5 und CPAP auf der nicht ventilierten Lunge vs. FiO2 1,0. Anästhesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther 2004; 39 (06) 360-364
  • 31 Stephens Devalle JM. Successful management of rabbit anesthesia through the use of nasotracheal intubation. J Am Assoc Lab Anim Sci 2009; 48 (02) 166-170
  • 32 Toal A, Gul N. Comparison of the arterial blood gas, arterial oxyhaemoglobin saturation and end-tidal carbon dioxide tension during sevoflurane or isoflurane anaesthesia in rabbits. Ir Vet J 2006; 59: 278-281
  • 33 Varga M. Airway management in the rabbit. J Exot Pet Med 2017; 26: 29-35
  • 34 Wagner J, Rieker T, Siegling-Vlitakis C. Blutgasanalyse beim Hund in der tierärztlichen Praxis – eine Übersicht. Tierarztl Prax Ausg K Kleintiere Heimtiere 2015; 43 (04) 260-272
  • 35 Wenger S. Anesthesia and analgesia in rabbits and rodents. J Exot Pet Med 2012; 21: 7-16
  • 36 Wettstein RB, Shelledy DC, Peters JI. Delivered oxygen concentrations using low-flow and high-flow nasal cannulas. Respir Care 2005; 50 (05) 604-609