Dtsch Med Wochenschr 2003; 128(10): 507-511
DOI: 10.1055/s-2003-37632
Übersichten
© Georg Thieme Verlag Stuttgart · New York

Das Glutathionsystem im menschlichen Gastrointestinaltrakt

Bedeutung und Einfluss klinischer FaktorenThe glutathione system in the human gastrointestinal mucosaMeaning and influence of clinical factorsI. Morgenstern1 , W. Kirch1
  • 1Institut für Klinische Pharmakologie (Direktor: Prof. Dr. Dr. W. Kirch), Medizinische Fakultät der Technischen Universität Dresden
Further Information

Publication History

eingereicht: 3.5.2002

akzeptiert: 23.9.2002

Publication Date:
06 March 2003 (online)

Das Glutathionsystem

Glutathion

Glutathion - ein Tripeptid aus den Aminosäuren γ-Glutaminsäure, Cystein und Glycin - kann leicht oxidiert werden und unter Abgabe zweier Wasserstoffatome ein Disulfid bilden. Diese Reaktion sowie das Gleichgewicht zwischen der reduzierten und der oxidierten Form sind von großer Bedeutung für die Aufrechterhaltung des intrazellulären Redoxgleichgewichtes. Weiterhin spielt Glutathion beim Transport verschiedener Hormone und Aminosäuren sowie beim Schutz der Zellen vor reaktiven Sauerstoffverbindungen, Medikamenten und Schwermetallionen eine wesentliche Rolle. Glutathion wird vorwiegend in der Leber und in den Nieren synthetisiert und über das Gefäßsystem in andere Organe transportiert.

Die Konjugation mit Glutathion ist ein bedeutender Entgiftungsweg für eine Vielzahl von chemischen Karzinogenen und Mutagenen, wie zum Beispiel von Aflatoxin B1, Benzidin und Dimethylnitrosamin. Das durch die Konjugationsreaktion verbrauchte Glutathion kann nachfolgend durch Neusynthese ersetzt werden. Der Glutathionmetabolismus im menschlichen Organismus ist in der Abb. [1] schematisch dargestellt.

Abb. 1 Glutathionmetabolismus.

Glutathion S-Transferasen

Die Glutathion S-Transferase (GST) ist ein bedeutendes Enzym für die Biotransformation von elektrophilen Substraten mit einem zum Teil toxischen oder kanzerogenen Potenzial. Der Vorgang der Biotranformation erfolgt in zwei Phasen. Als Phase-I-Reaktionen werden dabei Biotransformationsreaktionen bezeichnet, bei denen das hydrophobe, elektrophile Substrat oxidativ, reduktiv oder hydrolytisch verändert wird, während in den Phase-II-Reaktionen eine Kopplung an eine körpereigene Substanz erfolgt. Im Falle der GST ist dies das Tripeptid Glutathion. Anschließend werden die so metabolisierten Substrate mittels geeigneter Transportsysteme aus dem Organismus eliminiert. Im Falle der Glutathionkonjugate stellt das Mehrfachresistenz-vermittelnde Protein MRP2 eine bedeutendes Transportsystem dar.

In der Zelle liegt die GST sowohl in membrangebundener als auch in freier zytosolischer Form vor. Entsprechend den Unterschieden in der chemischen Struktur sowie in den biochemischen und katalytischen Eigenschaften erfolgt die Einteilung der humanen zytosolischen GST in vier verschiedene Isoenzymklassen. Sie werden in der Nomenklatur mit griechischen Buchstaben belegt: α, µ, π, q. [27] . Üblich ist auch eine Schreibweise mit den entsprechenden lateinischen Buchstaben, z. B. GSTA, GSTM, GSTP und GSTT. Innerhalb der Klassen existiert eine unterschiedliche Anzahl von Isoformen (Subunits) mit zum Teil nur geringfügigen Veränderungen in der Primärstruktur. Die Bezeichnung dieser Isoformen erfolgt mit arabischen Buchstaben, z. B. GSTA1 und GSTA2. Je zwei Isoforme bilden die funktionsfähige dimere Proteinstruktur, entweder als Homo- oder Heterodimer. Im Gastrointestinaltrakt ist die GSTP das Hauptisoenzym, welches für etwa 70 % der gesamten GST-Aktivität verantwortlich ist.

Die biologische Regulation der Expression der GST ist komplex und zeigt ein alters-, geschlechts-, gewebs-, spezies- und tumorspezifisches Muster [16]. So konnte in einer bisher noch nicht publizierten Arbeit unserer Arbeitsgruppe gezeigt werden, dass bezüglich der GST-Aktivität und der Konzentration der GSTP in der Kolonmukosa signifikante Geschlechtsunterschiede bestehen.

Differenzen im Isoenzymmuster der GST sind bedeutsam für inter- und intraindividuelle Unterschiede bezüglich des Metabolismus von Medikamenten, insbesondere Zytostatika. Eine erhöhte Aktivität der GST ist scheinbar mit einem verminderten Karzinomrisiko assoziiert [7].

kurzgefasst: Die Konjugation mit Glutathion stellt einen wichtigen Entgiftungsweg von potentiell schädlichen Substraten im menschlichen Organismus dar. Diese Reaktion wird durch die Glutathion-S-Transferase katalysiert. Zur Zeit sind vier verschiedene Isoenzymklassen der GST im Zytosol bekannt, deren Expression alters-, geschlechts-, gewebs-, spezies- und tumorspezifische Unterschiede aufweist.

Literatur

  • 1 Beil W, Obst B, Sewing K F, Wagner S. Helicobacter pylori reduces intracellular glutathione in gastric epithelial cells.  Dig Dis Sci. 2000;  45 1769-1773
  • 2 Bhaskar L, Ramakrishna B S, Balasuhramaniani K A. Colonic mucosal antioxidant enzymes and lipid peroxide levels in normal subject and patients with ulcerative colitis.  J Gastroenterol Hepat. 1995;  10 140-143
  • 3 Board P, Coggan M, Johnston P, Ross V, Suzuki T, Webb G. Genetic heterogenity of the human glutathione transferases: A complex of gene families.  Pharmacol Ther. 1990;  48 357-369
  • 4 Bogaards J JP, Verhagen H, Willems M I, van Poppel G, van Bladeren P J. Consumption of brussels sprouts results in elevated (-class glutathione S-transferase levels in human blood plasma.  Carcinogenesis. 1994;  15 1073-1075
  • 5 Butler W J, Ryan P, Roberts-Thomson I C. Metabolic genotypes and risk for colorectal cancer increased risk in individuals with glutathione transferase theta 1 (GSTT1) gene defect.  Gastroenterology. 1997;  112 A542
  • 6 Clapper M L, Szarka C E, Pfeiffer C R. et al . Preclinical and clinical evaluation of broccoli supplements as inducer of glutathione S-transferase activity.  Clin Cancer Res. 1997;  3 25-30
  • 7 Clapper M L, Szarka C E. Glutathione S-transferases - biomarkers of cancer risk and chemopreventive response.  Chemico-Biological Interactions. 1998;  111 377-388
  • 8 Clapper M L, Hoffmann S J, Tew K D. Characterization of glutathione S-transferases in human colon carcinomas.  Proc Am Ass Cancer Res. 1988;  29 290
  • 9 Cotton S C, Sharp L, Little J, Brockton N. Glutathione S-transferase polymorphisms and colorectal cancer: a HuGE Review.  Am J Epidem. 2000;  151 7-31
  • 10 Deakin M, Elder J, Hendricksen C. Glutathione S-transferase GSTT1 genotypes and susceptibility to cancer: studies of interactions with GSTM1 in lung, gastric and colorectal cancers.  Carcinogenesis. 1996;  17 881-884
  • 11 Duncan H, Swan C, Green J. et al . Susceptibility to ulcerative colitis and Crohn`s disease: interactions between glutathione S-transferase GSTM1 und GSTT1 genotypes.  Clin Chim Acta. 1995;  240 53-61
  • 12 Gertig D M, Stampfer M, Haimann C H. Glutathione S-transferase GSTM1 und GSTT1 polymorphisms and colorectal cancer risk: a prospective study.  Cancer Epidem Biomark Prev. 1998;  7 1001-1005
  • 13 Graham S. Results of case-control studies of diet and cancer in Buffalo, New York.  Cancer Res. 1983;  43 (Suppl) 2409-2413
  • 14 Grubben M JAL, van den Braak C CM, Peters W HM. et al . Low levels of colonic glutathione S-transferase in patients with x-linked agammaglobulinaemia.  Eur J Clin Invest. 2000;  30 642-645
  • 15 Guyonnet D, Siess M, Le Bon A M, Suschetet M. Modulation of phase II enzymes by organsulfur compounds from allium vegetables in rat tissues.  Toxicol Appl Pharmacol. 1999;  154 50-58
  • 16 Hayes J D, Pulford D J. The glutathione S-transferase supergene family: regulation of GST and the contribution of the isoenzymes to cancer chemoprotection and drug resistance.  Crit Rev Biochem Molecular Biol. 1995;  30 445-600
  • 17 Hertevig E, Nilsson A, Seidegard J. The expression of glutathione transferase ( in patients with inflammatory bowel disease.  Scand J Gastroenterol. 1994;  29 729-735
  • 18 Hirowaka K, Kawasaki H. Changes in glutathione in gastric mucosa of gastric ulcer patients.  Res Commun Mol Pathol Pharmacol. 1995;  88 163-176
  • 19 Hoensch H, Morgenstern I, Petereit G, Roelofs H MJ, Peters W HM, Kirch W. Influence of clinical factors, diet and drugs on the human upper gastrointestinal glutathione system.  Gut. 2002;  50 235-240
  • 20 Hoppencamps R, Thies E, Younes M, Siegers C P. Glutathione and glutathione-dependent enzymes in the human gastric mucosa.  Klin Wochenschr. 1984;  62 183-186
  • 21 Howie A F, Forrester L M, Glancey M J. et al . Glutathione S-transferase and glutathione peroxidase expression in normal and tumor human tissues.  Carcinogenesis. 1990;  11 451-458
  • 22 Inone M, Nobukuni Y, Ando Y, Hirota M, Morino Y. Interorgan metabolism of glutathione as the defence mechanism against oxidative stress. Amsterdam: Elsevier In: Tanabe T, Hook JB, Endon H, editors. Nephrotoxicity of antibiotics and immunsuppressant 1986
  • 23 Katoh T, Nagata N, Kuroda Y, Itoh H, Kawahara A, Bell D A. Glutathione S-transferase M1 (GSTM1) und T1 (GSTT1) genetic polymorphism and susceptibility to gastric and colorectal adenocarcinoma.  Carcinogenesis. 1996;  17 1855-1859
  • 24 Lee E, Huang Y, Zhao B, Seow-Choen F, Balakrishnan A, Chan S H. Genetic polymorphism of conjugating enzymes and cancer risk: GSTM1, GSTT1, NAT1 and NAT2.  J Toxicol Sci. 1998;  23 140-142
  • 25 Lin H J, Probst-Hensch N M, Louie A D. et al . Glutathione transferase null genotype, broccoli, and lower prevalence of colorectal adenomas.  Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 1998;  7 647-652
  • 26 Loguercio C, Taranto D, Vitale L M, Beneduce F, del Vecchio Blanco C. Effect of liver cirrhosis and age on the glutathione concentration in the plasma, erythrocytes and gastric mucosa of man.  Free Rad Biol Med. 1996;  20 483-488
  • 27 Mannervik B, Awasthi Y C, Board P G. Nomenclature for human glutathione transferases.  Biochem J. 1992;  282 305-306
  • 28 Maugard C M, Charrier J, Brignon Y J. Allelic deletion at glutathione S-transferase M1 locus and its association with breast cancer susceptibility.  Chem Biol Interact. 1998;  111 - 112 365-375
  • 29 Michelet F, Gulguen R, Leroy P, Wellman M, Nicolas A, Siest G. Blood and plasma glutathione measured in healthy subjects by HPLC: relation to sex, aging, biological variables and life habits.  Clin Chem. 1995;  41 1509-1517
  • 30 Mulder T PJ, Verspaget H W, Sier C FM. et al . Glutathione S-transferase pi in colorectal tumors is predictive for overall survival.  Cancer Res. 1995;  55 2696-2702
  • 31 Nijhoff W A, Bosboom M A, Smidt M H, Peters W HM. Enhancement of rat hepatic and gastrointestinal glutathione and glutathione S-transferases by α-angelealactone and flavone.  Carcinogenesis. 1995;  16 607-612
  • 32 Nijhoff W A, Peters W HM. Quantification of induction of rat oesophageal, gastric and pancreatic glutathione and glutathione S-transferase by dietatry anticarcinogenes.  Carcinogenesis. 1994;  15 1769-1772
  • 33 Oijen A H, Verhulst M L, Roelofs H M, Peters W HM, de Boer W A, Jansen J B. Eradication of helicobacter pylori restores glutathione S-transferase activity and glutathione levels in antral mucosa.  Jpn J Cancer Res. 2001;  92 1329-1334
  • 34 Peters W HM, Kock L, Nagengast F M, Kemers P G. Biotransformation enzymes in human intestine: critical low levels in the colon.  Gut. 1991;  32 408-412
  • 35 Peters W HM, Nagengast F M, van Tongeren J HM. Glutathione S-transferase, cytochrome P450 and uridine 5’-diphosphate-glucuronyltransferase in human small intestine and liver.  Gastroenterology. 1989;  96 783-789
  • 36 Peters W HM, Roelofs H MJ, Hectors M PC, Nagengast F M, Jansen J BMJ. Glutathione and glutathione S-transferases in Barrett`s epithelium.  Br J Cancer. 1993;  67 1413-1417
  • 37 Peters W HM, Roelofs H MJ, Nagengast F M. et al . Human intestinal glutathione S-transferases.  Biochem J. 1989;  257 471-476
  • 38 Peters W HM, Nagengast F M, Wobbes T. Glutathione S-transferases in normal and cancerous human colon tissue.  Carcinogenesis. 1989;  10 2371-1374
  • 39 Schipper D L, Wagenmans M JM, van Haelst U. et al . Glutathione S-transferase in gastric carcinomas and in adjacent normal gastric epithelium: Immunohistochemical and biochemical analyses.  Anticancer Res. 1996;  16 565-572
  • 40 Shirin H, Pinto J T, Liu L U, Merzianu M, Sordillo E M, Moss S F. Helicobacter pylori decreases gastric mucosal glutathione.  Cancer Lett. 2001;  164 127-133
  • 41 Sleisinger M H, Fordtran J S. Gastrointestinal and Liver Disease - Pathophysiology/Diagnosis/Management. 6th edition Philadelphia: W.B. Saunders Company 1998
  • 42 Spigelman A D, Nugent K P, Penna C, Foulds S, Phillips R K. Glutathione S-transferase Mu phenotype in patients with familial adenomatous polyposis and in unaffected controls.  Cancer Detect Prev. 1994;  18 253-258
  • 43 Strange R C, Matharoo B, Faulder G C. et al . The human glutathione S-transferases: a case-control study of the incidence of the GST1 0 phenotype in patients with adenocarcinoma.  Carcinogenesis. 1991;  12 25-28
  • 44 Szarka C E, Pfeiffer G R, Hum S T. et al . Glutathione S-transferase activity and glutathione mu expression in subjects with risk for colorectal cancer.  Cancer Res. 1995;  55 2789-2793
  • 45 van Treptow-Lishaut S, Beckemmer G, Rowland I, Dolara P, Pool-Zobel B L. The carbohydrate crystalean and colonic microflora modulate expression of glutathione S-transferase subunits in colon of rats.  Eur J Nutr. 1999;  38 76-83
  • 46 Tsuchida S, Sato K. Glutathione transferases and cancer.  Crit Rev Biochem Mol Biol. 1992;  27 337-384
  • 47 van Lieshout E MM, Jansen J BMJ, Peters W HM. Biomarkers in Barrett`s esophagus.  Int J Ocol. 1998;  13 855-864
  • 48 van Lieshout E MM, Peters W HM, Jansen J BMJ. Effect of oltipraze, (-tocopherol, (-carotene and phenethylisothiocyanate on rat oesophageal, gastric, colonic and hepatic glutathione, glutathion S-transferase and peroxidase.  Carcinogenesis. 1996;  17 1439-1445
  • 49 van Lieshout E MM, Tiemessen D M, Witteman B J, Jansen J B, Peters W HM. Low glutathione and glutathione S-transferase levels in Barrrett`s esophagus as compared to normal esophageal epithelium.  Jpn J Cancer Res. 1999;  90 81-85
  • 50 Witte J S, Longnecker M P, Bird C L, Lee E R, Franke H D, Haile R W. Relation of vegetable, fruit and grain consumption to colorectal adenomatous polyps.  Am J Epidemiol. 1996;  144 1015-1027
  • 51 Zhong S, Wyllie A H, Banes D, Wolf C R. Relationship between GSTM1 genetic polymorphism and susceptibility to bladder, breast and colon cancer.  Carcinogenesis. 1993;  14 1821-1824

Dr. med. Ingolf Morgenstern

Institut für Klinische Pharmakologie, Universitätsklinikum Dresden

Fiedlerstraße 27

01307 Dresden

Phone: 0351/4585196

Fax: 0351/4584341

Email: ingolf.morgenstern@mailbox.tu-dresden.de

    >